ISSN 2226-6976 (Print)
ISSN 2414-9640 (Online)

Markers for systemic inflammation in HIV-infected patients with different blood HIV RNA levels: diagnostic significance and comparative analysis

Matuzkova A.N., Pshenichnaya N.Yu., Suladze A.G., Dosyagaeva L.I., Tverdokhlebova T.I.

1 Rostov Research Institute of Microbiology and Parasitology, Russian Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Well-Being, Rostov-on-Don, Russia; 2 Rostov State Medical University, Ministry of Health of Russia, Rostov-on-Don, Russia
Objective. To determine the diagnostic significance of markers for systemic inflammation in HIV-infected patients according to the level of HIV replication.
Materials and methods. The investigation enrolled 224 HIV-infected patients who were divided into 3 main groups according to the level of HIV replication. The serum content of lipopolysaccharide-binding protein (LBP), procalcitonin, and cytokines (TNF-α, IL-1β, IL-6, IL-8, IL-10, INF-γ, and INF-α) was estimated by solid-phase enzyme immunoassay. The plasma concentration of HIV RNA was determined by real-time PCR.
Results. The mean concentrations of LBP and cytokines were significantly higher in all the patients than in the healthy individuals. There was a moderate correlation between the blood levels of HIV viral load and LBP in the groups of patients with a definable HIV replication level.
The HIV-infected patients with HIV viremia were observed to have signs of more active systemic inflammation accompanied by the enhanced production of anti-endotoxin protein and cytokines (TNF-a, IL-10, INF-α, and INF-γ) compared with the patients with an undetectable level of HIV viral load.
Conclusion. Antiretroviral therapy can substantially reduce the severity of systemic inflammation in patients with HIV infection, but there is no normalization in anti-endotoxin protein concentrations and cytokine status indicators even during effective treatment.

Keywords

HIV infection
HIV viral load
HIV replication
systemic inflammation

Активация иммунитета является одной из основных составляющих патогенеза ВИЧ-инфекции [1–3]. Выраженность системного воспаления и иммунной активации является важнейшим прогностическим индикатором прогрессирования заболевания [4–6].

Патологические изменения в кишечнике у больных ВИЧ-инфекцией являются пусковым механизмом для начала иммунной активации. Развитие интестинального дисбиоценоза, истощение CD4+-лимфоцитов в кишечнике и нарушение их функции приводит к повышению проницаемости слизистой оболочки для микробных продуктов и выходу липополисахарида (LPS) в кровь [7–9]. Повышение уровня LPS в крови является мощным предиктором прогрессирования ВИЧ-инфекции.

Степень микробной транслокации может быть оценена либо непосредственно через определение концентрации бактериальных продуктов в плазме, таких как LPS и бактериальные фрагменты нуклеиновых кислот, либо косвенно – по уровню sCD14 [10], липополисахарид-связывающего белка (LBP), EndoCAb и анифлагеллиновых антител [11–13].

У пациентов с ВИЧ-инфекцией установлены более высокие уровни sCD14, фактора некроза опухоли (ФНО-α), интерлейкина 6 (IL-6) и LPS вне зависимости от уровня репликации ВИЧ [14, 15].

Активность системного воспаления зависит от стадии ВИЧ-инфекции и эффективности АРТ. Вместе с тем у больных ВИЧ-инфекцией даже на фоне успешного приема АРТ со стойким подавлением вирусной репликации определяются более высокие уровни маркеров активации иммунной системы и системного воспаления по сравнению с контрольной группой лиц без ВИЧ-инфекции, причем эта остаточная иммунная активация связана с повышенной заболеваемостью оппортунистическими инфекциями и смертностью [16–19]. По данным ряда исследований [20–23], повышенные уровни интерлейкинов (IL-6, IL-10), а также высокочувствительного С-реактивного белка (hs-CRP) являются прогностическими факторами развития сердечно-сосудистых осложнений и онкологических заболеваний у больных ВИЧ-инфекцией.

Воздействие стойкой остаточной виремии ВИЧ на иммунную активацию, системное воспаление и микробную транслокацию в настоящее время неясны. Одна из гипотез заключается в том, что, несмотря на низкий уровень вирусной репликации, постоянное присутствие вируса может препятствовать нормализации воспалительных маркеров.

В связи с этим представляется перспективной оценка целесообразности использования маркеров системного воспаления у больных ВИЧ-инфекцией для оптимизации его мониторинга при этом заболевании.

Цель исследования – определение диагностической значимости маркеров системного воспаления у больных ВИЧ-инфекцией в зависимости от уровня вирусной репликации ВИЧ.

Материалы и методы

Для реализации поставленной цели исследованы 224 образца периферической крови больных ВИЧ-инфекцией, проходивших диспансерное обследование на базе Южного окружного центра по профилактике и борьбе со СПИДом ФБУН «Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии» Роспотребнадзора за период с 2016 по 2018 гг.

В исследование были включены больные ВИЧ-инфекцией мужского и женского пола старше 18 лет на всех стадиях заболевания. Средний возраст больных составил 36,8 ± 0,6 года. Пациенты в течение последних 6 мес. не должны были употреблять наркотических веществ, у них отсутствовали острые соматические заболевания, исключена беременность.

У всех пациентов ВИЧ-инфекция была диагностирована на основании эпидемиологических и клинических данных и подтверждена обнаружением специфических антител к белкам ВИЧ-1 методами ИФА и иммунного блоттинга.

У большинства больных (48,3%) была диагностирована стадия вторичных заболеваний 4А (из них фаза прогрессирования – у 11,1%, фаза ремиссии на фоне АРТ – у 37,2%). Стадия 3 (субклиническая) была установлена у 31,7% пациентов, стадия 4Б – у 18,5%, 4В – у 1,5%. Больные ВИЧ-инфекцией, включенные в исследование, были распределены на 3 основные группы: в 1-ю вошли пациенты с неопределяемой виремией с пороговым значением < 50 копий/мл (n = 82), во 2-ю – пациенты с определяемым уровнем концентрации РНК ВИЧ в диапазоне 50–10 000 копий/мл (n = 68), в 3-ю – пациенты с уровнем концентрации РНК ВИЧ > 10 000 копий/мл (n = 74). Все пациенты получали АРТ, которая проводилась в соответствии с рекомендациями, принятыми в Российской Федерации. Продолжительность АРТ в среднем составила 9,0 ± 0,5 года (диапазон значений – от 1 мес. до 21 года). Основные медико-социальные характеристики участников исследования представлены в табл.1.

Все пациенты были информированы о целях и задачах работы, получено их согласие на проведение необходимых диагностических мероприятий. Исследование одобрено этическим комитетом ФБУН «Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии» Роспотребнадзора.

Основные клинические, иммунологические и вирусологические исследования выполнены на базе клинико-диагностической лаборатории Южного окружного центра по профилактике и борьбе со СПИДом ФБУН «Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии» Роспотребнадзора.

Исследование концентрации LBP проводили методом ИФА с использованием тест-системы Hbt Human LBP ELISA Kit, Product Number: HK315 (Hycult biotechnology, Голландия).

Для иммуноферментного определения концентрации ФНО-α, IL-1β, IL-6, IL-8, IL-10, ИНФ-γ, ИНФ-α, ПКТ использовали наборы «Альфа-ФНО-ИФА-БЕСТ», «Интерлейкин-1бета-ИФА-БЕСТ», «Интерлейкин-6-ИФА-­БЕСТ», «Интерлейкин-8-ИФА-БЕСТ», «Интер­лейкин-10-ИФА-БЕСТ»,,«Гам­ма-Интер­­ферон-ИФА-БЕСТ», «Аль­фа-Интерферон-ИФА-БЕСТ», «Про­каль­цито­нин-ИФА-БЕСТ» (ЗАО «Вектор-Бест», Ново­сибирск) согласно инструкциям фирмы-производителя.

Методом Real-time PCR на аппаратах Roche Taqman 48, Biorad CFX-96 и Real-time DT-Prime («ДНК-Технология», Москва) определяли вирусную нагрузку (ВН) ВИЧ (копий/мл) с использованием лицензированных отечественных тест-систем «Реал-Тайм ПЦР», произведенных лабораторией Центра молекулярной диагностики ФБУН «Центральный НИИ эпидемиологии» Роспотребнадзора; применяли также тест-системы Abbot Real Time HIV-1 (Abbott Laboratories, США).

Все полученные результаты подвергнуты статистической обработке с использованием программы SPSS Statistics Base 22.0. Проводили определение средних и медианных величин, ошибки средней, стандартного отклонения, достоверности различий, наличия и силы корреляции признаков. Количественные величины представляли как среднее (М) ± ошибка средней (m). Определение достоверности различий при сравнении двух групп из совокупностей с нормальным распределением проводили с помощью t-критерия Стьюдента для двух выборок. Величину уровня значимости p принимали равной 0,05, что соответствует критериям, принятым в медико-биологических исследованиях.

Результаты

Согласно результатам проведенного исследования, у больных ВИЧ-инфекцией концентрация LBP определялась в диапазоне от 12,3 до 213,5 мкг/мл. Отмечена прямая зависимость между его концентрацией и уровнем ВН (рис. 1). У всех пациентов выявлено достоверное превышение среднего уровня LBP по сравнению со здоровыми лицами (6,2 ± 1,53 мкг/мл; p < 0,001) (табл. 2). В 3-й группе у больных уровень LBP был существенно выше, чем в 1-й: 77,52 ± 6,4 мкг/мл против 61,51 ± 2,3 мкг/мл (p < 0,05). Во 2-й и 3-й группах между уровнем ВН и содержанием LBP определялась корреляционная связь среднего уровня (r = 0,4).

Уровень IL-1β у 74,0% обследованных не превышал 11,0 пг/мл, указанный как верхний предел значений у здоровых людей; диапазон колебаний составил от 1,05 до 97,7 пг/мл. У пациентов всех 3 групп выявлено достоверное превышение среднего значения концентрации IL-1β по сравнению со здоровыми лицами: 5,83 ± 0,7, 5,82 ± 1,5 и 7,91± 1,5 пг/мл против 1,6 ± 0,6 пг/мл соответственно (pN-1 < 0,01, pN-2 < 0,05; pN-3 < 0,001).

ФНО-α – провоспалительный цитокин, по биологической активности близкий к IL-1β, определялся в диапазоне 0,8–6,2 пг/мл, при этом у 98,8% больных его показатель не превышал максимального значения нормы (6 пг/мл). У пациентов 3-й группы по сравнению с пациентами 1-й и 2-й групп средний уровень ФНО-α был существенно выше: 3,09 ± 0,2 пг/мл против 2,31 ± 0,08 и 2,5 ± 0,2 пг/мл соответственно (р1-3 < 0,001, p2-3 < 0,05). У пациентов всех 3 групп выявлено достоверное превышение среднего уровня ФНО-α по сравнению со здоровыми лицами (0,5 ± 0,1 пг/мл; p < 0,001).

Концентрация IL-6, регулирующего острофазный ответ, воспаление и другие механизмы иммунного ответа, в 80,2% образцов не превышала верхнего значения у здоровых, указанного в инструкции (0‒10 пг/мл; М = 2,0 пг/мл). Диапазон показателей концентрации IL-6 в трех группах – от 0,5 до 30,6 пг/мл. При этом выявлено достоверное превышение IL-6 в 3-й группе по сравнению со 2-й (5,82 ± 0,85 пг/мл против 3,71 ± 0,6 пг/мл; p2-3 < 0,05) и со здоровыми лицами (2,0 ± 0,8 пг/мл; pN-3 < 0,01).

Средний уровень концентрации IL-8 в трех группах варьировал в пределах 0,8–149,4 пг/мл. Показатели IL-8 превышали таковые у здоровых лиц (0–10 пг/мл) в 1-й группе у 22,3% пациентов, во 2-й – у 26,5%, в 3-й – у 47,1%. Между тем выявлены достоверные различия с нормой при сравнении средних уровней IL-8 во всех 3 группах: 2,0 ± 0,5 пг/мл против 17,3 ± 1,8, 14,01 ± 2,5 и 14,9 ± 2,6 пг/мл соответственно; p < 0,001).

Содержание двух провоспалительных цитокинов – интерферона-альфа (ИНФ-α) и интерферона-гамма (ИНФ-γ) – играющих ключевую роль в противовирусной защите организма, оказалось значительно повышенным (> 5 и > 10 пг/мл соответственно) у ,большинства, паци­ентов всех групп. Концентрация ИНФ-α определя­лась в пределах 1,1–95,6 пг/мл. В 3-й группе по сравнению с 1-й и 2-й группами средний уровень ИНФ-α был существенно выше: 12,86 ± 1,2 пг/мг против 7,45 ± 0,3 и 8,3 ± 0,4 пг/мг соответственно (р1-3 и p2-3 < 0,001). Частота повышенных значений ИНФ-α (показателей, превышающих верхние значения у здоровых лиц) в 1-й группе составила 84,8 ± 4,0%, во 2-й – 88,2 ± 3,9%, в 3-й – 99,1 ± 1,1% (рис. 2).

Продукция ИНФ-γ в исследуемых группах определялась в диапазоне от 1,8 до 380,0 пг/мл. Во 2-й и 3-й группах по сравнению с 1-й уровень ИНФ-γ был существенно выше: 22,3 ± 2,7 и 30,9 ± 3,3 пг/мл против 21,4 ± 3,2 пг/мл соответственно (р1-3< 0,001; р2-3 < 0,05). Превышение верхнего значения нормы ИНФ-γ (0‒10 пг/мл; М = 2 пг/мл) зафиксировано в 1-й группе у 50,9% пациентов, во 2-й – у 52,9%, в 3-й – у 85,3%. У больных ВИЧ-инфекцией выявлено достоверное превышение среднего уровня ИНФ-γ по сравнению со здоровыми (2,0 ± 0,3 пг/мл; p < 0,001) (рис. 3).

Уровень ПКТ у пациентов в исследуемых группах варьировали от 0,027 до 0,5 нг/мл, что в большинстве случаев соответствовало контрольным показателям у здоровых лиц (не выше 0,1 нг/мл). Только у 8,75% больных было зафиксировано превышение максимального значения показателя. Тем не менее при сравнении средних уровней ПКТ у ВИЧ-инфицированных пациентов всех 3 групп выявлено достоверное превышение концентраций по сравнению со здоровыми: 0,04 ± 0,01, 0,07 ± 0,012 и 0,05 ± 0,02 нг/мл против 0,01 ± 0,001 нг/мл соответственно (табл. 2)

Концентрация противовоспалительного цитокина IL-10 определялась в диапазоне от 3,4 до 25,9 пг/мл и не превышала верхней границы нормы (до 31 пг/мл). В 3-й группе средний уровень IL-10 был существенно выше, чем в 1-й и 2-й группах (8,41 ± 0,8 пг/мл против 6,2 ± 0,5 и 6,15 ± 0,7 пг/мл соответственно; р1-3 и p2-3 < 0,05) и по сравнению со здоровыми – 5,0 ± 1,4 пг/мл (pN-3 < 0,05).

Обсуждение

В последние годы роль хронической иммунной активации и воспаления в патогенезе ВИЧ становится все более очевидной [4, 7, 9, 18, 19]. Однако остаются невыясненными причины возникновения иммунной активации и не определены пути ее снижения. Полученные нами данные о значительно повышенной концентрации LBP у больных ВИЧ-инфекцией подтверждают, что у этих пациентов наблюдается усиленная продукция антиэндотоксиновых белков, приводящая к гиперактивации иммунной системы и формированию системного воспаления. Следует отметить, что, хотя у больных с подавленной вирусной репликацией на фоне АРТ регистрировали более низкие уровни LBP, чем у больныхв с виремией, у всех пациентов выявлено достоверное превышение уровня LBP по сравнению со здоровыми лицами. Определяемый нами методом ИФА количественный маркер антиэндотоксинового иммунитета LBP продемонстрировал зависимость активности антиэндотоксиновой защиты от степени вирусной репликации, о чем свидетельствует корреляционная связь средней силы между концентрацией РНК ВИЧ и содержанием LBP в крови в группах пациентов с определяемым уровнем виремии ВИЧ. Информативность LBP как показателя, отражающего активность системного воспаления, была показана и другими исследователями на примере хронических заболеваний кишечника, цирроза печени, хронического гепатита С. Принимая во внимание доступность метода ИФА, возможно использовать определение уровня LBP у больных ВИЧ-инфекцией для прогноза прогрессирования заболевания при проведении клинико-лабораторного мониторинга.

Содержание ИНФ-α и ИНФ-γ оказались значительно повышенными у большинства пациентов, что является неблагоприятным фактором для больных с тяжелыми стадиями ВИЧ-инфекции [24]. Более выраженным было повышение концентраций ИНФ-α и ИНФ-γ у пациентов с определяемым уровнем ВН ВИЧ. Уровни IL-1β, ФНО-α, IL-6, IL-8 и IL-10 были выше во 2-й и 3-й группах, но корреляционной связи между этими показателями и концентрацией РНК ВИЧ установлено не было. Тем не менее у пациентов 3-й группы средний уровень концентрации ФНО-α, IL-10, ИНФ-α и ИНФ-γ был достоверно выше, чем у больных 1-й группы. Таким образом, АРТ позволяет существенно снизить выраженность системного воспаления у больных ВИЧ-инфекцией, но даже на фоне эффективного лечения не происходит нормализации показателей цитокинового статуса. Даже при неопределяемом уровне РНК ВИЧ у больных сохраняется дисбаланс цитокиновой секреции, что проявляется более высоким, чем у здоровых содержанием в крови IL-1β, ФНО-α, IL-8, ИНФ-α и ИНФ-γ. Пациенты с более высоким уровнем маркеров системного воспаления, даже на фоне АРТ, подвергаются повышенному риску преждевременной смерти в связи с развитием печеночной, метаболической, почечной и сердечно-сосудистой патологии [4], и дальнейшее понимание их роли при ВИЧ-инфекции расширит наши знания о ее патогенезе и лечении.

Заключение

Таким образом, результаты нашего исследования доказали, что полное подавление вирусной репликации РНК ВИЧ связано с более низким уровнем LBP, ФНО-α, IL-10, ИНФ-α и ИНФ-γ. Это подтверждает важность поддержания ВН ВИЧ на неопределяемом уровне. Однако отсутствие нормализации маркеров микробной транслокации и системного воспаления у пациентов с устойчивой необнаруживаемой виремией на фоне АРТ доказывает, что необходимо дальнейшее изучение механизмов формирования иммунной активации с целью разработки дополнительных терапевтических подходов к коррекции антиэндотоксинового иммунитета и повышения эффективности лечения ВИЧ-инфекции.

References

1. Jinbiao L., Qianhao X., Runhong Z., Yong W., Qiaoyang X. et al. Comparative analysis of immune activation markers of CD8+ T cells in lymph nodes of different origins in SIV-infected chinese rhesus macaques. Frontiers in Immunology 2016; (7): 371. DOI: 10,3389/fimmu.2016.00371

2. Tien P.C., Choi A.I., Zolopa A.R., Benson C., Tracy R., Scherzer R. et al. Inflammation and mortality in HIV-infected adults: analysis of the FRAM study cohort. Journal of Acquired Immune Deficiency Syndromes. 2010; 55 (3): 316–22. DOI: 10.1097/QAI.0b013e3181e66216.

3. Paiardini M., Müller-Trutwin M. HIV-associated chronic immune activation. Immunological Reviews 2013; 254 (1): 78–101. DOI: 10.1111/imr.12079.

4. Miedema F., Hazenberg M.D., Tesselaar K., van Baarle D., de Boer R.J. et al. Immune activation and collateral damage in AIDS pathogenesis. Frontiers in Immunology 2013; (4): 298. DOI: 10.3389/fimmu.2013.00298 ·

5. Rajasuriar R., Wright E., Lewin S. Impact of antiretroviral therapy (ART) timing on chronic immune activation/inflammation and end-organ damage. Current Opinion in HIV and AIDS 2015; 10(1): 35. DOI: 10.1097/COH.0000000000000118.

6. Lichtfuss G.F., Hoy J., Rajasuriar R., Kramski M., Crowe S., Lewin Sh. Biomarkers of immune dysfunction following combination antiretroviral therapy for HIV infection. Biomarkers in Medicine 2011; 5(2): 171–86.

7. Brenchley J.M., Schacker T.W., Ruff L.E., Price D.A., Taylor J.H., Beilman G.J. et al. CD4+ T cell depletion during all stages of HIV disease occurs predominantly in the gastrointestinal tract. Journal of Experimental Medicine 2004; 200(6): 749–59.

8. Li Q., Duan L., Estes J.D., Ma Z.M., Rourke T., Wang Y. et al. Peak SIV replication in resting memory CD4+ T cells depletes gut lamina propria CD4+ T cells. Nature 2005; 434(7037): 1148–52. DOI: 10.1038/nature03513

9. Хасанова Г.Р., Биккинина О.И., Анохин В.А., Халиуллина C.В., Яковлев М.Ю. Кишечный эндотоксин как вероятный индуктор системного воспалительного ответа при ВИЧ-инфекции. Практическая медицина 2012; (56): 52–5. Khasanova G. R., Bikkinina O. I., Anokhin V. A., Khaliullina C. V., Yakovlev M. Yu. [Intestinal endotoxin as a probable inducer of systemic inflammatory response in HIV infection]. Prakticheskaуa meditsina 2012; (56): 52–5. (In Russ.).

10. Wada N.I., Jacobson L.P., Margolick J.B., Breen E.C., Macatangay B., Penugonda S. et al. The effect of HAART-induced HIV suppression on circulating markers of inflammation and immune activation. AIDS 2015; 29: 463–471. DOI: 10.1097/QAD.0000000000000545.

11. Pelsers M.M, Namiot Z. Kisielewski W., Namiot A., Januszkiewicz M., Hermens W.T. et al. Intestinal-type and liver-type fatty acid-binding protein in the intestine. Tissue distribution and clinical utility. Clinical Вiochemistry 2003; 36: 529–35. DOI:10.1016/S0009-9120(03)00096-1

12. Sandler N.G., Wand H., Roque A., Law M., Nason M.C., Nixon D.E. et al., INSIGHT SMART Study Group 2011. Plasma levels of soluble CD14 independently predict mortality in HIV infection. J. Infect. Dis. 2011; 203(6): 780–90. DOI: 10.1093/infdis/jiq118

13. Mavigner M., Cazabat M., Dubois M., L’Faqihi F.E., Requena M., Pasquier C. et al. Altered CD4+ T cell homing to the gut impairs mucosal immune reconstitution in treated HIV-infected individuals. The Journal of Сlinical Investigation 2012; 122(1): 62–9. https://doi.org/10.1172/JCI59011.

14. Reus S., Portilla J., Sánchez-Payá J., Giner L., Francés R., Such J. et al. Low-level HIV viremia is associated with microbial translocation and inflammation. Journal of Acquired Immune Deficiency Syndromes: JAIDS 2013; 62(2): 129–34. DOI: 10.1097/QAI.0b013e3182745ab0.

15. Falasca F., Di Carlo D., De Vito C., Bon I., d’Ettorre G., Fantauzzi A. et al. Evaluation of HIV-DNA and inflammatory markers in HIV-infected individuals with different viral load patterns. BMC Infect. Dis. 2017; 17(1): 581. DOI: 10.1186/s12879-017-2676-2.

16. Sauce D., Fastenackels S., Pauchard M., Ait-Mohand H., Schneider L. et al. HIV disease progression despite suppression of viral replication is associated with exhaustion of lymphopoiesis. Blood 2011; 117(19): 5142–51.

17. Hunt P.W., Hunt P.W., Brenchley J., Sinclair E., McCune J .M., Roland M., Page-Shafer K. et al. Relationship between T cell activation and CD4+ T cell count in HIV-seropositive individuals with undetectable plasma HIV RNA levels in the absence of therapy. J. Infect. Dis. 2008; 197(1): 126–33. DOI: 10.1086/524143

18. Neuhaus J., Jacobs D.R., Jr. Baker J.V., Calmy A., Duprez D., La Rosa A. et al. Markers of inflammation, coagulation, and renal function are elevated in adults with HIV infection. J. Infect. Dis. 2010; 201(12): 1788–795. DOI: 10.1086/652749.

19. Deeks S.G. Immune dysfunction, inflammation, and accelerated aging in patients on antiretroviral therapy. Topics in HIV medicine: a publication of the International AIDS Society, USA. 2009; 17(4): 118–23.

20. Bastard J.P., Soulié C., Fellahi S., Haïm-Boukobza S., Simon A., Katlama C. et al. Circulating interleukin-6 levels correlate with residual HIV viraemia and markers of immune dysfunction in treatment-controlled HIV-infected patients. Antiviral Therapy 2012; 17: 915–19. DOI: 10.3851/IMP2093

21. Borges Á.H., Silverberg M.J., Wentworth D., Grulich A.E., Fätkenheuer G., Mitsuyasu R. et al. Predicting risk of cancer during HIV infection: the role of inflammatory and coagulation biomarkers. AIDS 2013; 27(9): 1433–41. DOI: 10.1097/QAD.0b013e32835f6b0c

22. Grund B., Baker J.V., Deeks S.G., Wolfson J., Wentworth D., Cozzi-Lepri A. et al. Relevance of interleukin-6 and D-dimer for serious non-AIDS morbidity and death among HIV-positive adults on suppressive antiretroviral therapy. PLoS One 2016; 11(5). DOI:10.1371/journal.pone.0155100.

23. d’Ettorre G., Ceccarelli G., Pavone P., Vittozzi P., De Girolamo G., Schietroma I. et al. What happens to cardiovascular system behind the undetectable level of HIV viremia? AIDS Research and Therapу 2016; 13(1): 21. DOI: 10.1186/s12981-016-0105-z.

24. Ploquin M.J., Silvestri G., Müller-Trutwin M. Immune activation in HIV infection: what can the natural hosts of SIV teach us? Current Opinion in HIV and AIDS 2016; 11(2): 201–8.

For citations: Matuzkova A.N., Pshenichnaya N.Yu., Suladze A.G., Dosyagaeva L.I., Tverdokhlebova T.I. Markers for systemic inflammation in HIV-infected patients with different blood HIV RNA levels: diagnostic significance and comparative analysis. Èpidemiologiâ i infekcionnye bolezni. Аktual’nye voprosy 2018; (4):56–62 (In Russ.).

About the Authors

Anna N. Matuzkova, Infectiologist, Polyclinic Department, Southern District Center for AIDS Prevention and Control, Rostov Research Institute of Microbiology and Parasitology, Russian Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Well-Being,
Rostov-on-Don, Russia; е-mail: matuzkova@yandex.ru; ORCID: http://orcid.org/0000-0002-5980-3436
Prof. Natalia Yu. Pshenichnaya, MD, Head, Infectious Diseases Department with Course of Childhood Infectious Diseases, Faculty for Advanced Training and Professional Retraining of Specialists, Rostov State Medical University, Ministry of Health of Russia; Infectiologist, Infectious Diseases and Parasitology Clinic, Rostov Research Institute of Microbiology and Parasitology, Russian Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Well-Being, Rostov-on-Don, Russia; e-mail: natalia-pshenichnaya@yandex.ru; ORCID: http://orcid.org/ 0000-0003-2570-711X
Aleksandr G. Suladze, Can. Med. Sci.; Head, Southern District Center for AIDS Prevention and Control, Rostov Research Institute of Microbiology and Parasitology, Russian Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Well-Being, Rostov-on-Don, Russia; e-mail: hivrost@mail.ru; ORCID: http://orcid.org/0000-0002-9051-1220
Ludmila I. Dosyagaeva, Virologist, Clinical and Diagnostic Laboratory, Southern District Center for AIDS Prevention and Control, Rostov Research Institute of Microbiology and Parasitology, Russian Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Well-Being, Rostov-on-Don, Russia; e-mail: hivrost@mail.ru; ORCID: http://orcid.org/ 0000-0003-3715-0662
Tatiana I. Tverdokhlebova MD; Director, Rostov Research Institute of Microbiology and Parasitology, Russian Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Well-Being, Rostov-on-Don, Russia; e-mail: niimicrodouble@yandex.ru; ORCID: http://orcid.org/0000-0002-4280-6702

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.