ISSN 2226-6976 (Print)
ISSN 2414-9640 (Online)

Features of gastrointestinal tract microbiocenosis in patients with HIV infection

Popova D.M., Voznesensky S.L., Petrova E.V., Soboleva Z.A.

1) Peoples Friendship University of Russia, Moscow, Russia; 2) Infectious Diseases Clinical Hospital Two, Moscow Healthcare Department, Moscow, Russia
The importance of the intestinal microflora for human health has long been proven in many studies. Gut bacteria not only help digest foods, but are also involved in metabolic regulation as a whole, actively cooperate with the immune system, and support the body in the fight against bacterial and viral infections. From 500 to 1000 species of bacteria live in different parts of the human gastrointestinal tract. The total number of microbial cells in the adult gut microbiota was ascertained to average 1014 CFU/g, which was 10 times higher than that in the organism itself, and, in terms of the number of total genes, it exceeds the coding capacity of the human genome and accounts for more than three million genes. The gut microbiota performs a number of the most important functions: protective, metabolic, and trophic (structural) ones. HIV infection destructively affects the physiological interaction between the opportunistic microflora and the immune system. Impairments in the immunological and epithelial barriers lead to enteropathy, malabsorption syndrome, bacterial translocation, and intestinal infections. Prolonged bacterial translocation in the serum of HIV-infected patients can result in a systemic inflammatory response, which in turn can lead to disease progression and immune depletion. The review presents an update on the human microbiome, its studies, taxonomic composition, and functions. It considers separately the pathogenesis of gastrointestinal tract lesions in HIV infection and outlines the problems and prospects of studying the microbiome in HIV-infected patients.

Keywords

microbiota
microbiome
HIV infection
immune homeostasis
bacterial translocation
commensal bacteria

Важность кишечной микрофлоры

Микробиота желудочно-кишечного тракта (ЖКТ) является сложной экологической системой, обеспечивающей нормальную жизнедеятельность человека. Современный уровень знаний позволяет считать микробиоту виртуальным эндокринным метаболически активным органом. Совокупность разнообразия генов микробиоты человека известна как микробиом. В отличие от других эндокринных систем или органов, которые выделяют небольшое количество гуморальных факторов, микробиота кишечника имеет большой потенциал для производства сотен биологически активных продуктов [1]. Она представляет собой огромное разнообразие микробных видов, различающихся генетически и метаболически. Кишечная микробиота включает почти триллион микроорганизмов, принадлежащих к сотням различных видов. Метагеном фекальной микробиоты включает 9,9 х 106 микробных генов, что почти в 200 раз больше, чем геном человека. Общая масса (у взрослого человека) микробиоты ЖКТ достигает 2,5–3 кг. Численность популяции только E. coli насчитывает около 6 х109 клеток, а из общей суммы клеток макро- и микроорганизмов 90% принадлежит микроорганизмам [2]. Согласно традиционному взгляду, основанному на данных культуральных методов исследования, микробное сообщество кишечника человека объединяет 1012–1014 клеток, относящихся к 17 семействам, 45 родам, более чем к 1000 видов из 12 таксономическим групп. Соотношение анаэробов к аэробам – 1000:1. В целом функциональная активность этих микроорганизмов относительно неплохо изучена. Основными функциями являются антиинфекционная защита, обеспечение питанием эпителия толстой кишки (продукция бутирата), регуляция всасывания минералов и воды, синтез витаминов группы В и К, регуляция липидного и азотистого обмена, кишечной моторики, а также многочисленные иммунные функции. Однако внедрение новых методов исследования микрофлоры за последние годы позволило получить принципиально новые данные о ее численности, видовом составе и функциональном значении [1]. Важной инициативой на сегодняшний день является «Проект микробиома человека», включающий исследования для улучшения понимания характеристик микробиоты, связанной со здоровьем и заболеваниями человека [3]. В 2012 г. опубликовано полное описание состава и разнообразия микробиомов 5 локализаций человеческого организма (кишечник, кожа, носовая полость, полость рта, влагалище) в дополнение к быстро увеличивающемуся числу статей, посвященных более специфическим микробиом-ассоциированным проек­там. Большинство исследований микробиома основано на определении последовательности вариабельных областей высоко консервативного гена, кодирующего 16S-субъединицу рибосомальной РНК (16S рРНК) микроорганизмов. Этот ген присутствует в бактериях, но отсутствует у млекопитающих и содержит 9 гипервариабельных областей (от V1 до V9), что позволяет идентифицировать различные бактерии [4].

Состав кишечной микробиоты

Несмотря на значительное разнообразие видов микроорганизмов в составе микробиоты, большинство представителей принадлежат только к 4 типам современной биологической систематики: Bacteroidetes, Firmicutes, Actinobacteria и Proteobacteria. Firmicutes и Bacteroidetes составляют более 90% бактериального сообщества толстой кишки, где плотность микробиоты небольшая. В то же время представители типов Actinobacteria и Proteobacteria практически всегда присутствуют в составе микробиоты, но их содержание относительно невысоко [5]. К основным представителям кишечных Bacteroidetes относятся бактерии родов Bacteroides, Parabacteroides, Prevotella, Odoribacter, Barnesiella и Alistipes [6]. Тип Firmicutes включает 4 класса микроорганизмов: Clostridia, Bacilli, Erysipelotrichia и Negativicutes. Небольшое количество, не превышающее 1–2%, в кишечной микробиоте взрослых людей составляют бактерии типов Actinobacteria и Proteobacteria. Важнейшим и хорошо изученным представителем типа Actinobacteria является род Bifidobacterium. Тип Proteobacteria является гетерогенной группой грамотрицательных бактерий. К ним относятся представители семейства Enterobacteriaceae – E. coli, Klebsiella и др. Микробиота кишечника играет решающую роль в удалении из организма человека патогенных и условно-патогенных бактерий и предотвращении избыточного роста потенциально опасных «малочисленных» бактерий, колонизирующих ЖКТ. Полезные функции бактерий, населяющих кишечник человека, обсуждались еще лауреатом Нобелевской премии И.И. Мечниковым, идеи которого послужили основой для работы многих поколений исследователей. Он считал, что микрофлора кишечника может определять физическое и даже психическое здоровье человека. А открытие того факта, что бактерии кишечника человека участвуют в метаболизме лекарственных средств, произошло практически 100 лет назад.

Технологии изучения микробиома

Изучение комменсальных бактерий традиционно ограничивалось культивированием микроорганизмов. В 80-е годы C.R. Woese и G.E. Fox разработали новые молекулярно-биологические методы для иссле­дования микробиологической экологии – ПЦР и секвенирование ДНК/РНК [7, 8]. Для исследования кишечного микробиома используют секвенирование генов 16S рРНК, метагеномику, метатранскриптомику, метапротеомику, метаболомику [4]. При помощи первого метода изучают состав сообщества, он является экономически выгодным в сравнении с другими, полуколичественным, допускает разрешение родового уровня и иногда – уровня видов. Метагеномика изучает генерацию проектов геномов, их функциональные возможности, динамику роста. Данный метод является количественным, с его помощью возможно восстановление деформированного уровня, однако в настоящее время он очень дорог. Метод мета­транскриптомики основывается на изучении экс­прессии генов. Как правило, выявляются высоко экспрессируемые гены. Этот метод требует немедленного сохранения и обработки свежих или замороженных остатков кишечных образцов. При метапротеомике определяются доминирующие белки. Например, белок, секретируемый кишечной палочкой (ClpB), стимулирует интестинальные гормоны (глюкагон-подобный пептид 1 – мощный антигипергликемический гормон) и пептид YY (продуцируется в подвздошной кишке в ответ на кормление). Эти гормоны активируют анорексигенные области в головном мозге, вызывая чувство сытости. Метод метаболомики изучает метаболическую произ­водительность микробиома, является полуко­личественным, обнаруживает метаболиты, которые могут продуцироваться микробами, зависеть от диеты и «хозяина». Разнообразие молекулярных анализов для обнаружения и классификации микроорганизмов, оценки их кодирующих генов и генных продуктов показало, что микробы редко существуют в изоляции. Стало очевидно, что практически все среды обитания и каждый организм на земле имеют свою микробиоту [9].

Изменения микробиома, связанные с ВИЧ-1-инфекцией

В исследованиях ВИЧ-инфицированных лиц был обнаружен ряд различий в кишечном микробиоме. Анализ доступных литературных источников показывает неоднородность в отношении типа изучаемых субъектов (подвергаемых или не подвергавшихся лечению), типа используемого метода отбора проб (ректальная губка, мазок из стула, стул, биопсия участка ткани) и уровня изучаемой бактериальной классификации. Различия в микробиомах, наблюдаемые с использованием различных методов отбора проб, были изучены разными исследователями. В своей ранней работе E.G. Zoetendal и соавт. продемонстрировали, что у ВИЧ-отрицательных лиц бактерии, полученные при биопсии слизистой оболочки кишечника, значительно отличались от бактерий, обнаруженных в кале тех же людей [10]. S.M. Dillon и соавт. также наблюдали различия в изменениях таксонов, связанных с ВИЧ, в зависимости от метода отбора проб [11]. В частности, повышенная распространенность филогенетических бактерий у ВИЧ-инфицированных была отмечена только в образцах слизистой оболочки, а это позволяет предположить, что в образцах просвета могут отсутствовать потенциально патогенные изменения. Однако связанные с ВИЧ изменения относительной численности родов и семейств в типах бактериоидов были в целом одинаковыми на всех платформах отбора проб. Кроме того, обилие некоторых таксонов (например, превотелл) в образцах слизистой оболочки сильно коррелировало с маркерами воспаления кишечника. ВИЧ-1 реплицируется в лимфоидной ткани кишечника на ранних стадиях инфекции, в результате чего происходит массивное истощение в слизистой оболочке CD4 Т-клеток, в том числе клеток Th17 и Th22, которые играют решающую роль в поддержании гомеостаза кишечника. Также развивается энтеропатия, связанная с продуцированием энтероцитами цитокинов, повреждающих слизистую оболочку, в ответ на внедрение ВИЧ.

Таким образом, оба эти механизма (местный и системный воспалительный ответ) приводят к разрушению эпителиального барьера, позволяя бактериальным продуктам и самим микроорганизмам проникать через собственную пластинку в системный кровоток – происходит бактериальная транслокация, которая приводит к системной иммунной активации и провоцирует прогрессирование заболевания у пациентов, не получающих АРТ [12].

Таксоны, связанные с иммунными маркерами при ВИЧ

Исследования микробиома человека показали, что у ВИЧ-инфицированных значительно больше распространены превотеллы и значительно меньше – бактероиды на уровне рода, чем у неинфицированных контроллеров [13–15]. Это наблюдалось в образцах стула и биопсии слизистой оболочки в когортах леченных и нелеченых ВИЧ-инфицированных. Но не во всех исследованиях микробиомов у пролеченных и нелеченых ВИЧ-инфицированных этот феномен наблюдался в образцах ректальной губки [16–18]. P. Nowak и соавт. [18] не нашли переизбытка превотелл в ВИЧ-положительной когорте, однако в начале исследования они отметили, что рост этих бактерий снизился после АРТ. В крупнейшем на сегодняшний день исследовании, посвященном изучению микробиома кишечника у ВИЧ-инфицированных, M. Noguera-Julian и соавт. [19] обнаружили высокий рост превотелл и низкий уровень роста бактерий энтеротипа в образцах стула мужчин, практикующих секс с мужчинами (МСМ), независимо от статуса ВИЧ-1-инфекции, что может объяснить предполагаемую связь между этим энтеротипом и статусом ВИЧ-инфекции в предыдущих исследованиях, которые не контролировали сексуального поведения. Изучение образцов кала жителей Уганды, где передача ВИЧ происходит преимущественно при гетеросексуальных контактах, подтверждает гипотезу о том, что преобладание превотелл обусловлено сексуальным поведением, так как не было выявило зависимости между преобладанием превотелл и серологическим статусом ВИЧ-1 или уровнем иммуносупрессии [20]. Тем не менее у ВИЧ-1-серонегативных угандийцев превотелла-преобладающая микробиота стула была на исходном уровне, возможно, из-за различий в рационе питания, поэтому исследование может оказаться недостаточно мощным для выявления небольшого роста распространенности превотелл, связанной с ВИЧ. В научной литературе сообщается об обогащении протеобактерий и реципрокном уменьшении количества фирмикутов у ВИЧ-инфицированных, особенно в образцах слизистой оболочки кишечника [21]. В исследовании D.M. Dinh и соавт. [16] протеобактерии (включая энтеробактерии), были выявлены в большом количестве у ВИЧ-позитивных лиц и способствовали иммунной активации. Эта связь между ВИЧ-инфекцией и повышенной распространенностью протеобактерий, особенно в образцах слизистой оболочки, может быть более значимой, чем сдвиг превотелла/бактероиды, учитывая склонность протеобактерий к транслокации в модели нечеловеческих приматов [22]. Результаты исследования микробиома у ВИЧ-инфицированных, не получавших АРТ, свидетельствуют о том, что продолжающееся воспаление слизистой оболочки, вызванное неконтролируемой репликацией вируса, может в значительной степени влиять на изменения микробиома. И наоборот, частичная «нормализация» микробиома, наблюдаемая при подавлении вируса при АРТ, может указывать на то, что по мере восстановления иммунной системы слизистой оболочки она способна лучше управлять кишечной средой и обеспечивать более нормальный микробиом. Однако не во всех исследованиях было обнаружено смещение микробиома в лучшую сторону после АРТ [18]. Антиретровирусные препараты могут оказывать прямое влияние на комменсальные бактерии и/или фаговые вирусы, которые их заражают, что может отчасти объяснить постоянные различия в микробиомах длительно пролеченных ВИЧ-инфицированных и серонегативных контроллеров. Потерю фекального микробного разнообразия отмечали при колите, вызванном Clostridium difficile, и воспалительном заболевании кишечника [23]. Некоторые авторы обнаружили сходную потерю разнообразия, связанную с ВИЧ-статусом [24]. Однако в нескольких публикациях сообщалось об отсутствии потери разнообразия, а в одном исследовании было обнаружило увеличение разнообразия в разных группах ВИЧ-инфицированных пациентов [25].

Расширение вирома при ВИЧ-инфекции

Анелловирусы, которые являются sDNA-вирусами, часто встречаются в образцах кала и крови людей, но не являются возбудителями заболеваний. Ранние исследования вирома показали, что уровень плазменной ДНК анелловируса увеличивается при СПИДе и других иммунодефицитных состояниях, а затем снова снижается после восстановления иммунитета [26]. Совсем недавно была исследована потенциальная роль этих вирусов в патогенезе иммунной активации. Анелловирусы были связаны с прогрессированием заболевания печени при коинфекции ВИЧ и гепатита С [27]. Исследование, проведенное среди жителей Уганды, показало, что количество анелло- и аденовирусов было выше у пациентов с низким уровнем CD4+-лимфицитов [28]. В дальнейшем предстоит выяснить, какую роль играют эти вирусы в нарушении целостности эпителиального барьера кишечника.

ВИЧ-инфекция и нарушение взаимодействия хозяин–микроб

ВИЧ-инфекция связана с хроническим воспалительным состоянием, о чем свидетельствуют повышенные уровни циркулирующих растворимых TNFR1, TNFR2, IL-6 и маркеров активации Т-клеток (экспрессия CD38 и HLA-DR) [29]. Кроме того, ВИЧ-инфекция связана с повышением уровня плазменных маркеров микробной транслокации и активации моноцитов [липополисахарид-связывающего белка (ЛПС) и растворимого CD14 (sCD14)] и повреждением эпителиального барьера [30]. Иммунная активация и разрушение кишечного барьера наиболее высоки при острой инфекции и снижаются при хронической инфекции. Отмечено, что на фоне АРТ происходит более значимое снижение [31]. На клиническом уровне повышение уровня системных маркеров воспаления, микробной транслокации и повреждения эпителиального барьера были связаны с неблагоприятными клиническими исходами [32]. N.G. Sandler и соавт. [33] показали, что sCD14 был независимым предиктором смертности при ВИЧ-инфекции. A.R. Tenorio и соавт. [34] отметили, что более высокие уровни растворимых маркеров воспаления (TNFR1, IL-6) коррелировали с заболеваниями, не связанными со СПИДом: инсультом, сердечно-сосудистыми заболеваниями и раком. Т-клетки собственной пластинки кишечника могут быть более восприимчивы к ВИЧ-инфекции из-за высокого уровня активации и экспрессии рецепторов ВИЧ, таких как CCR5 [35]. Эксперименты на моделях нечеловеческих приматов выявили быстрое и массовое истощение CD4 Т-клеток собственной пластинки уже через 7 дней после заражения [36]. У людей при ранней и острой ВИЧ-инфекции истощаются более 50% этих клеток, продуцирующих IL-17 и IL-22 [37]. Механизм этого истощения заключается в гибели инфицированных клеток в результате апоптоза, а также клеток-свидетелей в результате пироптоза [38]. Плотность CD4 Т-клеток слизистой оболочки не всегда полностью восстанавливается, несмотря на эффективную АРТ и подавление вирусной репликации [39]. Плохое их восстановление приводит к важным функциональным последствиям для барьера слизистой оболочки кишечника: неспособности защитить от вторжения патогенных микроорганизмов, а также потере цитокинов, необходимых для поддержания нормальной барьерной функции [40, 41]. Обнаружено, что плохая реконструкция CD4 Т-клеток коррелирует с дисфункцией плотного соединения между эпителиальными клетками барьера слизистой оболочки [42]. Иммуногистохимический анализ биоптатов кишечника показал, что у ВИЧ-инфицированных пациентов с плохим восстановлением CD4 Т-клеток снижается пролиферация эпителиальных клеток и усиливается инфильтрация нейтрофилов [43]. Эти изменения коррелировали с повышением уровня циркулирующего sCD14, системного маркера ЛПС-индуцированной активации моноцитов, и косвенно – микробной транслокации. Th22 и Th17 вместе с подмножеством врожденных лимфоцитов (врож­денными лимфоидными клетками типа 3 – ILC3) ответственны за выработку IL-22, критического цитокина для поддержания эпителиального барьера, который вызывает опосредованную стволовыми клетками пролиферацию эпителиальных клеток в кишечнике [44]. Изучению влияния ассоциированного с ВИЧ дисбактериоза на экспрессию Th22 было посвящено недавнее небольшое пилотное исследование трансплантации фекальной микробиоты (FMT) от здоровых макак ВИЧ-инфицированным макакам. Оно продемонстрировало увеличение частоты периферических клеток Th22 после трансплантации и снижение воспалительных маркеров слизистой оболочки кишечника [45]. A.K. Steele и соавт. [38] сообщили, что пироптоз является важным механизмом ВИЧ-ассоциированной гибели CD4 Т-клеток в лимфоидной ткани кишечника в дополнение к апоптозу, вызванному прямой вирусной инфекцией. Эти данные могут объяснить усиление воспалительной реакции, наблюдаемой при ВИЧ-энтеропатии, поскольку пироптоз в конечном итоге приводит к высвобождению цитоплазматического содержимого, в том числе IL-1β, что вызывает повышенную проницаемость в плотных соединениях эпителиальных клеток кишечника и может в конечном итоге способствовать дисфункции эпителиального барьера [46]. Несколько авторов исследовали связь между различными кишечными бактериальными таксонами и периферическим восстановлением CD4 Т-клеток [47]. Изобилие Bacteroides в кале и биоптатах толстой кишки было связано с более медленным восстановлением концентрации CD4 Т-клеток, тогда как обилие лактобацилл – с более высоким их содержанием. На более широких таксономических уровнях отряд Lactobacilliales и семейство Bacteroidaceae, по-видимому, защищали клетки от истощения. Исследования с использованием пробиотиков, содержащих Lactobacillus, при ВИЧ-инфекции, по-видимому, подтверждают роль Lactobacillus spp. в снижении истощения CD4 Т-клеток, хотя в доступной научной литературе, касающейся пробиотиков, результаты были неоднозначными [48, 49]. Обилие Prevotella было связано с активацией и истощением CD4 T-клеток [50]. Связь между обилием Prevotellа и активацией Т-клеток слизистой оболочки кишечника была отмечена только при микробиомном анализе образцов биоптатов толстой кишки, а не кала или аспиратов. Это позволяет предположить, что прилипающие к слизистой оболочке бактерии могут играть более важную роль в определении ее иммунного статуса, чем просветные организмы [11]. Насколько нам известно, на сегодняшний день только в 4 работах опубликованы результаты исследований образцов микробиомов из биоптатов слизистой оболочки ЖКТ ВИЧ-инфицированных [51].

Заключение

Суммируя итоги анализа научных публикаций, можно заключить, что дисфункция ЖКТ является прогностическим фактором инфекционных и неинфекционных осложнений и смертности при ВИЧ-инфекции. Сниженная функциональная активность ЖКТ сохраняется даже на фоне АРТ. Механизмы, лежащие в основе дисфункции, до конца не изучены. Микробиота кишечника играет важную роль в элиминации из организма человека патогенных и условно-патогенных бактерий и предотвращении избыточного роста потенциально опасных микроорганизмов. Актуален не только состав кишечной микрофлоры, но и продукты их жизнедеятельности. ВИЧ-инфекция резко изменяет кишечный ландшафт, что приводит к выраженным изменениям структуры и иммунологических свойств ЖКТ. ВИЧ размножается в лимфоидной ткани кишечника, что приводит к массовому истощению CD4 Т-клеток в слизистой оболочке, в том числе Th17 и Th22, которые имеют решающее значение в целостности кишечника. При ВИЧ-инфекции развивается энтеропатия, связанная с разрушением эпителиального барьера, что позволяет проникать бактериальным продуктам, а также, возможно, жизнеспособным бактериям через собственную пластинку слизистой оболочки в системный кровоток. Возникает бактериальная транслокация, которая связана с системной активацией иммунного ответа и приводит к прогрессированию ВИЧ-инфекции. Следовательно, чтобы лучше понять влияние ВИЧ на кишечный микробиом, в будущих исследованиях нужно учитывать компоненты микробиома, связь с АРТ и с коррекцией дисбактериоза для внедрения новых парадигм лечения.

До конца не известна роль вирусных патогенов в прогрессировании энтеропатии при ВИЧ. Дальнейшие исследования того, как определенные симбиотические бактерии могут помочь пациентам с ВИЧ-инфекцией избавиться от вирусных, бактериальных, протозойных и грибковых инфекций, могут быть полезны для определения тактики обследования и лечения данной группы больных.

References

1. Pashinskaya E.S., Pobyarzhin V.V., Semenov V.M. [Features of the biology and parasitism of Giardia (literature review)]. Klinicheskaya infektologiya i parazitologiya 2017; (1): 74–86. (In Russ.). https://rucont.ru/efd/596393

2. Khodjayan A. B., Mikhailenko A. K., Fedorenko N. N. [Medical рarasitology and parasitic diseases. In: Khodjayan A.B., Kozlov S.S., Golubeva M.V. (eds.) Protozooses and helminthoses. Textbook. 2nd edition, revised and expanded]. Moscow: GEOTAR-Media, 2016. 448 p. (In Russ.).

3. Human Microbiome Project Consortium. Structure, function and diversity of the healthy human microbiome. Nature 2012; 486(7402): 207–14. DOI https://doi.org/10.1038/nature11234

4. Wilson K.H., Blitchington R.B., Greene R.C. Amplification of bacterial 16S ribosomal DNA with polymerase chain reaction. J. Clin. Microbiol. 1990; 28: 1942–6. PMCID: PMC268083 PMID: 2095137

5. Walter J., Ley R. The human gut microbiome: ecology and recent evolutionary changes. Ann. Rev. Microbiol. 2011; 65: 411–29. DOI: 10.1146/annurev-micro-090110-102830

6. Roxstrom-Lindquist K., Palm D., Reiner D., Ringqvist E., Svard S.G. Giardia immunity-an update. Trends Parasitol. 2006; 22: 26–31. DOI: 10.1016/j.pt.2005.11.005

7. Woese C.R. Bacterial evolution. Microbiol. Rev. 1987; 51: 221–71.

8. Woese C.R., Fox G.E. Phylogenetic structure of the prokaryotic domain: the primary kingdoms. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1977; 74: 5088–90. DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.74.11.5088

9. Susan V., Lynch Ph.D., Pedersen O. The Human Intestinal Microbiome in Health and Disease. Nеw Eng. J. Med. 2016; 2370: 2369–79. DOI: 10.1056/NEJMra1600266

10. Zoetendal E.G., von Wright A., Vilpponen-Salmela T., Ben-Amor K., Akkermans A.D., de Vos W.M. Mucosaassociated bacteria in the human gastrointestinal tract are uniformly distributed along the colon and differ from the community recovered from feces. Appl. Environ. Microbiol. 2002; 68: 3401–7. DOI: 10.1128/aem.68.7.3401-3407.2002

11. Dillon S. M., Lee E.J., Kotter C.V., Austin G.L., Dong Z. et al. An altered intestinal mucosal microbiome in HIV-1 infection is associated with mucosal and systemi c immune activation and endotoxemia. Mucosal Immunol. 2014; (7): 983–94. DOI: https://doi.org/10.1038/mi.2013.116

12. Stephanie M.D., Daniel N.F., Wilson C.C. The gut microbiome and HIV-1 pathogenesis: a two-way street. AIDS 2016, 30: 2737–51. DOI: 10.1097/QAD.0000000000001289

13. Lozupone C.A., Li M., Campbell T.B. et al. Alterations in the gut microbiota associated with HIV-1 infection. Cell Host Microbe 2013; 14: 329–39. DOI: 10.1016/j.chom.2013.08.006

14. Sun Y., Ma Y., Lin P. et al. Fecal bacterial microbiome diversity in chronic HIV-infected patients in China. Emerg. Microb. Infect. 2016; (5): 31. DOI: 10.1038/emi.2016.25

15. Va´zquez-Castellanos J.F., Serrano-Villar S., Latorre A. et al. Altered metabolism of gut microbiota contributes to chronic immune activation in HIV-infected individuals. Mucosal Immunol. 2015; (8): 760–72. DOI: 10.1038/mi.2014.107

16. Dinh D.M., Volpe G.E., Duffalo C. et al. Intestinal microbiota, microbial translocation, and systemic inflammation in chronic HIV infection. J. Infect. Dis. 2015; 211: 19–27. DOI: 10.1093/infdis/jiu409

17. McHardy I. H., Li X., Tong M. et al. HIV Infection is associated with compositional and functional shifts in the rectal mucosal microbiota. Microbiome 2013; (1): 26. DOI: 10.1186/2049-2618-1-26

18. Nowak P., Troseid M., Avershina E. et al. Gut microbiota diversity predicts immune status in HIV-1 infection. AIDS 2015; 29: 2409–18. DOI: 10.1097/QAD.0000000000000869

19. Noguera-Julian M., Rocafort M., Guille´n Y. et al. Gut microbiota linked to sexual preference and HIV infection. EBioMedicine 2016; 5: 135–46. DOI: 10.1016/j.ebiom.2016.01.032

20. Monaco C.L., Gootenberg D.B., Zhao G. et al. Altered virome and bacterial microbiome in human immunodeficiency virusassociated acquired immunodeficiency syndrome. Cell Host Microbe 2016; 19: 311–22. DOI: 10.1016/j.chom.2016.02.011

21. Dillon S.M., Lee E.J., Kotter C.V. et al. Gut dendritic cell activation links an altered colonic microbiome to mucosal and systemic T-cell activation in untreated HIV-1 infection. Mucosal Immunol. 2016; 9: 24–37. DOI: https://doi.org/10.1038/mi.2015.33

22. Klase Z., Ortiz A., Deleage C. et al. Dysbiotic bacteria translocate in progressive SIV infection. Mucosal Immunol. 2015; 8: 1009–20. DOI: 10.1038/mi.2014.128

23. Chang J.Y., Antonopoulos D.A., Kalra A. et al. Decreased diversity of the fecal microbiome in recurrent Clostridium difficile–associated diarrhea. J. Infect. Dis. 2008; 197: 435–8. DOI: 10.1086/525047

24. Yu G., Fadrosh D., Ma B. et al. Anal microbiota profiles in HIV-positive and HIV-negative MSM. AIDS 2014; 28: 753–60. DOI: 10.1097/QAD. 0000000000000154

25. Vujkovic-Cvijin I., Dunham R.M., Iwai S. et al. Dysbiosis of the gut microbiota is associated with HIV disease progression and tryptophan catabolism. Sci. Transl. Med. 2013; 5: 193. DOI: 10.1126/scitranslmed. 3006438

26. Thom K., Petrik J. Progression towards AIDS leads to increased Torque teno virus and Torque teno minivirus titers in tissues of HIV infected individuals. J. Med. Virol. 2007; 79: 1–7. DOI: 10.1002/jmv.20756

27. Garcı´a-Alvarez M., Berenguer J., Alvarez E. et al. Association of torque teno virus (TTV) and torque teno mini virus (TTMV) with liver disease among patients coinfected with human immunodeficiency virus and hepatitis C virus. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2013; 32: 289–97. DOI: 10.1007/s10096-012-1744-1

28. Handley S.A., Thackray L.B., Zhao G. et al. Pathogenic simian immunodeficiency virus infection is associated with expansion of the enteric virome. Cell 2012; 151: 253–66. DOI: 10.1016/j.cell.2012.09.024

29. Deeks S.G., Kitchen C.M., Liu L. et al. Immune activation set point during early HIV infection predicts subsequent CD4+ T-cell changes independent of viral load. Blood 2004; 104: 942–7. DOI: 10.1182/blood-2003-09-3333

30. Tincati C., Douek D.C., Marchetti G. Gut barrier structure, mucosal immunity and intestinal microbiota in the pathogenesis and treatment of HIV infection. AIDS Res. Ther. 2016; 13: 19. DOI: 10.1186/s12981-016-0103-1

31. Krishnan S., Wilson E.M., Sheikh V. et al. Evidence for innate immune system activation in HIV type 1-infected elite controllers. J. Infect. Dis. 2014; 209: 931–9. DOI: 10.1093/infdis/jit581

32. Viskovic K., Zidovec-Lepej S., Gorenec L. et al. Cardiovascular markers of inflammation and serum lipid levels in HIV-infected patients with undetectable viraemia. J. Int. AIDS Soc. 2014; 7(4, Suppl. 3): 19548. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-018-24446-4

33. Sandler N.G., Wand H., Roque A. et al; INSIGHT SMART Study Group. Plasma levels of soluble CD14 independently predict mortality in HIV infection. J. Infect. Dis. 2011; 203: 780–90. DOI: 10.1093/infdis/jiq118

34. Tenorio A.R., Zheng Y., Bosch R.J. et al. Soluble markers of inflammation and coagulation but not T-cell activation predict non-AIDS-defining morbid events during suppressive antiretroviral treatment. J. Infect. Dis. 2014; 210: 1248–59. DOI: 10.1093/infdis/jiu254

35. Lapenta C., Boirivant M., Marini M. et al. Human intestinal lamina propria lymphocytes are naturally permissive to HIV-1 infection. Eur. J. Immunol. 1999; 29: 1202–08. DOI: 10.1002/(SICI)1521-4141(199904)29 :04<1202::AID-IMMU1202>3.0.CO;2-O

36. Guadalupe M., Reay E., Sankaran S. et al. Severe CD4+ T-cell depletion in gut lymphoid tissue during primary human immunodeficiency virus type 1 infection and substantial delay in restoration following highly active antiretroviral therapy. J. Virol. 2003; 77: 11708–17. DOI: 10.1128/JVI.77. 21.11708-11717.2003

37. Brenchley J.M., Schacker T.W., Ruff L.E. et al. 2004. CD4+ T-cell depletion during all stages of HIV disease occurs predominantly in the gastrointestinal tract. J. Exp. Med. 2004; 200: 749–59. DOI: 10.1084/jem.20040874

38. Steele A.K., Lee E.J., Manuzak J.A. et al. Microbial exposure alters HIV-1-induced mucosal CD4+ T cell death pathways ex vivo. Retrovirology 2014; (11): 14. DOI: 10.1186/1742-4690-11-14

39. Mehandru S., Poles M.A., Tenner-Racz K. et al. Lack of mucosal immune reconstitution during prolonged treatment of acute and early HIV-1 infection. PLoS Med. 2006; 3: e484. DOI: 10.1371/journal.pmed.0030484

40. Fernandes S.M., Pires A.R., Ferreira C. et al. Enteric mucosa integrity in the presence of a preserved innate interleukin 22 compartment in HIV type 1-treated individuals. J. Infect. Dis. 2014; 210: 630–40. DOI: 10.1093/ infdis/jiu126

41. Kim C.J., Nazli A., Rojas O.L., Chege D. et al. A role for mucosal IL-22 production and Th22 cells in HIV-associated mucosal immunopathogenesis. Mucosal Immunol. 2012; 5: 670–80. DOI: 10.1038/ mi.2012.72

42. Tincati C., Merlini E., Braidotti P., Ancona G. et al. Impaired gut junctional complexes feature late-treated individuals with suboptimal CD4+ T-cell recovery upon virologically suppressive combination antiretroviral therapy. AIDS 2016; 30: 991–1003. doi:10.1097/QAD. 0000000000001015

43. Somsouk M., Estes J.D., Deleage C. et al. Gut epithelial barrier and systemic inflammation during chronic HIV infection. AIDS 2015; 29: 43–51. doi: 10.1097/QAD.0000000000000511

44. Lindemans C.A., Calafiore M., Mertelsmann A.M. et al. Interleukin-22 promotes intestinal-stem-cell-mediated epithelial regeneration. Nature 2015; 528: 560–4. doi: 10.1038/nature16460

45. Hensley-McBain T., Zevin A.S., Manuzak J. et al. Effects of fecal microbial transplantation on microbiome and immunity in simian immunodeficiency virus-infected macaques. J. Virol. 2016; 90: 4981–9. DOI: 10.1128/ JVI.00099-16

46. Al-Sadi R., Ye D., Said H.M., Ma T.Y. Cellular and molecular mechanism of interleukin-1b modulation of Caco-2 intestinal epithelial tight junction barrier. J. Cell. Mol. Med. 2011; 15: 970–82. DOI: 10.1111/j.1582-4934. 2010.01065.x

47. Pe´rez-Santiago J., Gianella S., Massanella M. et al. Gut Lactobacillales are associated with higher CD4 and less microbial translocation during HIV infection. AIDS 2013; 27: 1921–31. DOI: 10.1111/j.1582-4934.2010. 01065.x

48. Hummelen R., Changalucha J., Butamanya N. L. et al. Effect of 25 weeks probiotic supplementation on immune function of HIV patients. Gut Microbes 2011; 2: 80–5. DOI: 10.4161/gmic.2.2.15787

49. Irvine S.L., Hummelen R., Hekmat S. et al. Probiotic yogurt consumption is associated with an increase of CD4 count among people living with HIV/AIDS. J. Clin. Gastroenterol. 2010; 44: e201–e205. DOI: 10.1097/ MCG.0b013e3181d8fba8

50. Ellis C.L., Ma Z.M., Mann S.K. et al. Molecular characterization of stool microbiota in HIV-infected subjects by panbacterial and orderlevel 16S ribosomal DNA (rDNA) quantification and correlations with immune activation. J. Acquir. Immune Defic. Syndr. 2011; 57: 363–70. DOI: 10.1097/QAI.0b013e31821a603c

51. Paquin-Proulx D., Ching C., Vujkovic-Cvijin I. et al. Bacteroides are associated with GALT iNKT cell function and reduction of microbial translocation in HIV-1 infection. Mucosal Immunol. 2017; 10 (Issue 1): 69–78. DOI: 10.1038/ mi.2016.34

About the Authors

Daria M. Popova, Postgraduate Student, Department of Infectious Diseases with Courses of Epidemiology and Phthisiology, Medical Institute, Peoples’ Friendship University of Russia; Infectiologist, Intensive Care Unit for Patients with HIV Infection, Infectious Diseases Clinical Hospital Two, Moscow Healthcare Department, Moscow, Russia; popovad@ikb2.ru; https://orcid.org/0000-0002-4056-9192
Sergey L. Voznesensky, Cand. Med. Sci., Associate Professor, Department of Infectious Diseases with Courses of Epidemiology and Phthisiology, Medical Institute, Peoples' Friendship University of Russia, Moscow, Russia; voznesenskiy_sl@ pfur.ru; http://orcid. org/0000-0001-5669-1910
Elena V. Petrova, Head, Intensive Care Unit for Patients with HIV Infection, Infectious Diseases Clinical Hospital Two, Moscow Healthcare Department, Moscow, Russia; bolnica2@yandex.ru

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.