ISSN 2226-6976 (Print)
ISSN 2414-9640 (Online)

Antibiotic therapy for skin and soft tissue infections: a comparative analysis of investigations of the efficacy and safety of a new-generation oxazolidinone class drug

Fokina E.G.

Central Research Institute of Epidemiology, Russian Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Well-Being, Moscow, Russia
The review gives data on the clinical efficacy and safety of SIVEXTRO® (tedizolid), a new oxazolidinone-class drug. Tedizolid is highly effective in treating gram-positive skin and soft tissue infections (erysipelas, acute cellulitis, skin abscess, wound infections with a lesion size area of at least 75 cm2) and, according to the 2013 FDA guidelines, are considered as acute bacterial infections of the skin and its structures. The ESTABLISH-1 has compared the efficacy and tolerability of a 6-day cycle of treatment with 200-mg once-per-day dose of tedizolid with a 10-day cycle with 600-mg twice-per-day dose of linezolid. The ESTABLISH-2 study has compared 200-mg once-per-day dose of intravenous/oral tedizolid for 6 days with 600-mg twice-per-day dose of intravenous/oral linezolid for 10 days. The investigation has revealed that the 6-day cycle of treatment with tedizolid is as effective as the 10-day cycle with linezolid and demonstrated the best tolerability.

Keywords

skin and soft tissue infections
acute bacterial infections of the skin and its structures
erysipelas
cellulitis
skin abscess
wound infections
Streptococcus
Staphylococcus
tedizolid
linezolid

До настоящего времени инфекции кожи и мягких тканей (ИКМТ) остаются наиболее частой причиной обращения больных за амбулаторной и стационарной помощью [1–5]. По экспертным оценкам, ИКМТ ежегодно регистрируются примерно у 700 000 пациентов и являются либо самостоятельным заболеванием, либо следствием механических повреждений и хирургических манипуляций [1, 6–8]. Важность проблемы ИКМТ подчеркивает тот факт, что в структуре обращений к врачам поликлинического звена (хирурги, инфекционисты, дерматологи) их частота достигает 70%, а процент хирургических инфекций мягких тканей (послеоперационные нагноения, постинъекционные осложнения) в России составляет около 24% [1].

В последние годы наблюдается трансформация ИКМТ [1, 7, 8]. Например, увеличивается доля наиболее тяжелых – геморрагических форм рожи, особенно у больных с сопутствующей соматической патологией [9]. Развитие геморрагического синдрома сопровождается повышением риска осложнений и затягиванием сроков реконвалесценции. Риск развития геморрагических форм рожи в 9,9 раз выше при локализации инфекционного очага на нижних конечностях по сравнению с лицом (ОШ = 9,9 [2,8; 34,7]) [10].

Общепризнанным основным возбудителем рожи как инфекционного воспаления принято считать β-гемолитический стрептококк групп А и G, однако в последнее время обсуждается участие золотистого стафилококка и грамотрицательных бактерий с повышением их роли при осложненных вариантах болезни [11–13]. Описанная тенденция расценивается как одна из причин роста числа случаев рожи тяжелой степени, часто –рецидивирующей рожи с затяжным периодом реконвалесценции [14].

За последнее десятилетие в развитии нозокомиальных инфекций возрастает роль метициллин-устойчивых штаммов золотистого стафилококка (CA-MRSA), микст-инфекции [7, 8, 11, 14–16]. Следует отметить увеличение частоты выделения штаммов MRSA у больных сахарным диабетом, осложнившимся развитием диабетической стопы: в 1974 г. – 2%, в 1995 г. – 22%, в 2003 г. – 60%, в 2004 г. – 63% [1, 17].

В хирургических стационарах РФ частота выделения штаммов MRSA в последние годы постоянно увеличивается и составляет около 65%, летальность достигает 21% [1, 18].

Наиболее частой этиологической причиной ИКМТ служат бактерии Staphylococcus aureus, Streptococcus spp. (Streptococcus pyogenes, в меньшей степени – стрептококки групп В, С и G), энтеробактерии и анаэробные микроорганизмы (Bacteroides группы fragilis и Clostridium spp.). S. aureus является наиболее актуальным возбудителем в большинстве случаев ИКМТ [1, 13, 15, 17, 19]. Эффективность лечения стафилококковых инфекций снижается вследствие широкого распространения в стационарах штаммов MRSA, которые, помимо закономерной устойчивости к β-лактамным антибиотикам, часто характеризуются устойчивостью к другим классам антибактериальных препаратов, в частности к аминогликозидам, макролидам, линкозамидам, фторхинолонам [3, 15].

По данным исследований А.А. Еровиченкова и соавт. [20], при молекулярно-биологическом исследовании мазков (полимеразная цепная реакция с обратной транскрипцией) с поверхности кожи, пунктатов подкожной клетчатки из области воспалительного очага, содержимого булл и образцов крови при буллезно-геморрагической роже нижних конечностей у 54,6% больных получены образцы ДНК Streptococcus spp, у 36,3% – Staphylococcus spp. и у 25,9% – одновременно ДНК 2 или 3 микроорганизмов. В содержимом булл обнаруживали ДНК Streptococcus spp. в 52,9% случаев, Staphylococcus spp. – в 38,2%, Pseudomonas aeruginosa – в 6,0%, Klebsiella spp. – в 2,9%. Следовательно, структура возбудителей ИКМТ не ограничивается S. аureus и отличается микробным разнообразием [1, 20–26].

Осложненные бактериальные ИКМТ, вызванные штаммами MRSA, имеют большое медицинское и социальное значение, так как требуют больших материальных затрат на лечение [1, 7, 8]. Высокая актуальность MRSA при данных заболеваниях подразумевает включение в протоколы лечения антибактериальных препаратов, активных против этих микроорганизмов (линезолид, ванкомицин и др.), в том числе в качестве средств эмпирической терапии при наличии факторов риска MRSA-инфекций. Другой актуальной проблемой является широкое распространение устойчивых к цефалоспоринам грамотрицательных энтеробактерий, прежде всего E. coli и Klebsiella spp. [18, 21–26].

Рост антибиотико-резистентных штаммов грамотрицательной и грамположительной флоры, отражающий общую тенденцию эволюции микроорганизмов, а в ряде случаев являющийся следствием нерационального использования антибактериальных препаратов, вызывает определенные трудности в выборе тактики лечения и негативно влияет на клинические результаты лечения ИКМТ. Необходимо отметить, что в выборе адекватной тактики лечения важную роль играют знание анатомии мягких тканей, уровень локализации инфекции, что в совокупности с анализом конкретной клинической ситуации, учетом факторов риска и знанием эпидемиологической обстановки позволяет с достаточно высокой долей вероятности определить потенциального возбудителя и назначить адекватную рациональную эмпирическую антибактериальную терапию.

Необходимо подчеркнуть, что существенную помощь в выборе тактики лечения может оказать использование в клинической практике современных классификаций ИКМТ, учитывающих степень тяжести, глубину и площадь поражения кожи и подкожных структур и характер преморбидного фона при различных бактериальных процессах [1, 3, 27, 28].

Управление по надзору за качеством пищевых продуктов и лекарственных средств США (FDA) с 1998 г. регламентирует деление «острых бактериальных инфекций кожи и кожных структур» (Acute Bacterial Skin and Skin Structure Infections – ABSSSIs) на неосложненные и осложненные [27]. «Неосложненные инфекции кожи и мягких тканей» определяют как инфекции, для лечения которых требуется обычный курс антибактериальной терапии или проведение дренирования. Сюда отнесены фолликулит, неосложненные абсцессы, целлюлит и необширные раневые инфекции. «Осложненные инфекции кожи и мягких тканей» требуют более сложного лечения, госпитализации и хирургического вмешательства и включают в себя осложненные инфекции кожи и кожных структур и некротические инфекции мягких тканей [27].

В октябре 2013 г. FDA обновила классификацию ABSSSIs – «Острые бактериальные инфекции кожи и кожных структур», добавив новую категорию – «острые бактериальные инфекции кожи и мягких тканей (Skin and Soft Tissue Infections)» или сокращенно ОБИКМТ.

Тем самым была выделена отдельная группа заболеваний (целлюлит, рожа, раневая инфекция и абсцесс кожи с минимальной площадью поражения ≥ 75 см2), вызываемая различными грамположительными, в том числе метициллин-резистентным S. aureus (MRSA), реже – грамотрицательными бактериями [8, 27, 28]. Сравнение терминологии «осложненные инфекции кожи и мягких тканей», «осложненные инфекции кожи и кожных структур» и «острые бактериальные инфекции кожи и мягких тканей», принятое в зарубежных рекомендациях, приведено в Приложении.

В РФ, согласно национальным рекомендациям «Хирургические инфекции кожи и мягких тканей» (2009), используется классификация ИКМТ с указанием кода болезни по МКБ -10 в следующем виде (табл. 1).

Таким образом, изменение структуры заболеваемости ИКМТ в сторону более тяжелых клинических вариантов болезни, включая геморрагические формы, затяжной период реконвалесценции, рост доли MRSA в структуре патогенных возбудителей диктует необходимость непрерывного поиска новых, современных и безопасных антибактериальных препаратов [1, 15, 16, 18, 29–31].

В этой связи особый интерес представляют антибиотики группы оксазолидинонов, к которым относится препарат СИВЕКСТРО® (МНН: тедизолид), характеризующийся более высоким профилем эффективности и безопасности в сравнении с другими препаратами стандартной антибактериальной терапии [32–34]. Это первый препарат из группы оксазолидинонов второго поколения, получивший одобрение FDA к применению при ИКМТ [28]. Имеющийся к настоящему времени опыт применения тедизолида показал его преимущества в сравнении с предшественником – линезолидом – в отношении противомикробной активности, включая микроорганизмы со сниженной чувствительностью к линезолиду и ванкомицину [23–26]. Кроме того, был отмечен более высокий профиль безопасности препарата в сравнении с линезолидом [32–48]. В настоящем обзоре представлен анализ проведенных исследований эффективности и безопасности препарата тедизолид.

Структура и механизм антимикробной активности

Тедизолид представляет собой антибиотик, предлагающий удобный (1 раз в день), короткий (в течение 6 дней) курс лечения осложненных ИКМТ с возможностью проведения ступенчатой (внутривенный → пероральный путь введения) терапии с отсутствием необходимости индивидуального мониторинга и корректировки дозы.

Активным компонентом препарата СИВЕКСТРО® является тедизолид [(5R)-3-{3- фтор-4-[6-(2-метил-2H-тетразол-5-ил)пиридин-3-ил]фенил}-5-(гидро­ксиметил)-1,3-оксазолидин-2-он]. Тедизолида фосфат является пролекарством, в организме он превращается в активный метаболит – тедизолид.

В структуру молекулы тедизолида по сравнению с линезолидом были внесены существенные изменения, благодаря которым антибактериальная активность повысилась в 4–32 раза, риск развития резистентности снизился в 16 раз, и препарат приобрел более широкий спектр действия по сравнению с линезолидом [35, 36].

Химическое строение тедизолида отличается наличием принципиально нового D-кольца, содержащего дополнительную метилтетразольную группу (рис. 1).

Эти структурные особенности обеспечивают повышение антибактериальной активности препарата и уменьшают риск развития резистентности микроорганизмов. Химическая структура тедизолида характеризуется также наличием гидроксильной группы на A-кольце в положении C-5. В отличие от более крупной ацетамидной группы линезолида в условиях сfr-опосредованного метилирования нуклеотидного остатка A2503 рРНК 23S, гидроксильная группа меньшего размера у тедизолида отлично связывается с метилированным участком связывания, подходя как «ключ к замку», что обеспечивает антибактериальную активность препарата при наличии у микроорганизмов cfr-опосредованной резистентности. D-кольцо за счет прочных водородных связей повышает аффинность тедизолида к рибосомальной субъединице 50S и усиливает его противомикробные свойства.

Механизм действия тедизолида основан на способности связываться с 23S рибосомальной РНК (рРНК) пептидилтрансферазного центра, входящего в состав рибосомальной субъединицы 50S, в результате чего блокируется процесс белкового синтеза. Антибактериальная активность оксазолидинонов коррелирует с их аффинностью к участку связывания на рибосоме. Более высокая активность тедизолида по сравнению с линезодидом обусловлена лучшей взаимосвязью его с рРНК [35].

Активность тедизолида in vitro

Благодаря структурным изменениям на обоих концах молекулы, активность тедизолида in vitro в отношении грамположительных бактерий повышается в 4–32 раза. К этим возбудителям относят Staphylococcus aureus (включая штаммы MRSA и MSSA), Staphylococcus haemolyticus, Staphylococcus lugdunensis, Streptococcus pyogenes, Streptococcus agalactiae, группу Streptococcus anginosus (в том числе Streptococcus anginosus, Streptococcus intermedius и Streptococcus constellatus), а также Enterococcus faecalis (включая ванкомицин-резистентные энтерококки – VRE). Минимальная подавляющая концентрация (МПК) тедизолида в 4–32 раза ниже, чем МПК линезолида [32–34, 41].

Активность in vitro усиливается in vivo благодаря высокой внутриклеточной кумуляции тедизолида в гранулоцитах, макрофагах, что способствует более быстрой эрадикации бактерий (например, S. aureus) по сравнению с линезолидом [38–40].

Механизмы, препятствующие развитию резистентности

Частота развития микробной резистентности к тедизолиду у S. aureus и других возбудителей в 16 раз ниже, чем к линезолиду [34].

На чувствительность бактерий к оксазолидинонам влияют 2 типа хромосомных мутаций. Это точечные мутации в 23S рРНК (то есть G2576T; C2192T; G2447T; T2500A; A2503G; T2504C; G2505A; G2766T) или в рибосомных белках (белки L3, L4, кодируемые генами rplC, rplD в хромосоме соответственно). Третий механизм снижения чувствительности опосредован действием расположенного на плазмиде cfr-гена/фермента (хлорамфеникол/флорфеникол), который метилирует 23S рРНК в положении A2503. Однако между гидроксиметильной группой на конце молекулы тедизолида и cfr-метилированной РНК в положении A2503 не образуется пространственного несоответствия, чем объясняется сохранение антибактериальной активности тедизолида в отношении cfr-положительных штаммов. За счет этого препарат сохраняет активность in vitro в отношении бактерий (например, S. aureus), несущих cfr-ген. При наличии мутаций рРНК и рибосомальных белков МПК тедизолида в 4–8 раз ниже, чем у линезолида [43, 44, 49–51].

Фармакокинетическая характеристика

Тедизолид выпускается в двух лекарственных формах, предназначенных для внутривенного введения и перорального приема. Готовый раствор для внутривенного введения содержит 200 мг тедизолида фосфата, который вводят в течение 60 мин. Каждая таблетка содержит 200 мг тедизолида фосфата и принимается независимо от приема пищи. После перорального приема тедизолида фосфата пиковая (Cmax) концентрация действующего вещества (тедизолида) в плазме крови достигается в течение 3 ч. Период полувыведения тедизолида составляет около 10–11 ч (табл. 2) [45].

Такая продолжительность периода полувыведения позволяет вводить препарат в организм 1 раз в сутки. При применении тедизолида фосфата после приема пищи (высококалорийной, с высоким содержанием жиров) или натощак были получены сходные значения площади под кривой «концентрация–время» (ПФК 0-∞).

Таким образом, тедизолид можно применять независимо от приема пищи. Биодоступность тедизолида фосфата при пероральном приеме составляет 91,5%, что позволяет проводить ступенчатую терапию (внутривенное введение →пероральный прием) без корректировки дозы [45, 48, 50].

Связь с белками крови составляет приблизительно 70–90%. Средний равновесный объем распределения тедизолида у здорового взрослого человека после однократного внутривенного введения 200 мг тедизолида фосфата варьирует от 67 до 80 л.

В клиническом исследовании с использованием микродиализа тедизолид проникал в подкожно-жировую клетчатку и скелетно-мышечную ткань в концентрациях, равных содержанию свободной фракции препарата в плазме крови [37].

Установлено, что тедизолид избирательно накапливается в жидкости эпителиальной выстилки легочной ткани и альвеолярных макрофагах. Коэффициент пенетрации тедизолида в жидкость эпителиальной выстилки и альвеолярные макрофаги был соответственно в 40 и 20 раз выше концентрации свободной фракции препарата в плазме крови [40].

Кроме тедизолида (95%), у человека не обнаруживается других значимых циркулирующих метаболитов в плазме крови. Препарат не взаимодействует с печеночными ферментами CYP450. Большая часть антибиотика выводится в течение 96 ч через печень, при этом 82% дозы выводится с калом и 18% – с мочой в неактивном виде [45, 48, 50].

Показания к применению

СИВЕКСТРО® (тедизолид) зарегистрирован в РФ для лечения осложненных ИКМТ, вызванных чувствительными грамположительными микроорганизмами. Спектр антибактериальной активности препарата включает патогенные микроорганизмы, чувствительные к тедизолиду in vitro, в отношении которых в клинических исследованиях была показана эффективность.

Аэробные и факультативные грамположительные бактерии:

  • Staphylococcus aureus (включая штаммы MRSA и MSSA);
  • Streptococcus pyogenes (β-гемолитические стрептококки группы А);
  • Streptococcus agalactiae (β-гемолитические стрептококки группы В),
  • группа Streptococcus anginosus, включая Streptococcus anginosus, Streptococcus intermedius и Streptococcus constellatus;
  • Enterococcus faecalis.

Клиническая эффективность тедизолида в отношении перечисленных ниже патогенных микроорганизмов не была установлена, однако результаты исследований in vitro позволяют предполагать, что они чувствительны к тедизолиду в отсутствие приобретенных механизмов резистентности.

Аэробные и факультативно анаэробные грамположительные бактерии:

  • Staphylococcus epidermidis (включая штаммы MRSA и MSSA);
  • Staphylococcus haemolyticus;
  • Staphylococcus lugdunensis;
  • Enterococcus faecium.

Тедизолид, как правило, неактивен в отношении грамотрицательных бактерий.

Профиль безопасности

Возраст до 18 лет является противопоказанием для назначения тедизолида, так как безопасность и эффективность препарата в данной возрастной группе не установлены. Препарат не назначают беременным и женщинам в период грудного вскармливания.

Прием тедизолида по 200 мг 1 раз в сутки в течение 21 дня оказывал минимальное воздействие на содержание гранулоцитов и тромбоцитов по сравнению с плацебо у здоровых добровольцев и в клинических исследованиях III фазы [32–34, 39–47, 51].

Такие демографические или клинические факторы, как возраст, пол, расовая и этническая принадлежность, вес, ИМТ и состояние почек или печени, не оказывают значимого влияния на фармакокинетику тедизолида фосфата.

Отсутствует необходимость корректировать дозу препарата у пациентов с почечной недостаточностью или находящихся на гемодиализе. Согласно исследованиям, у пациентов с ожирением, в том числе алиментарным, необходимость корректировки дозы также отсутствует.

Тедизолид не оказывает влияния на сердечную реполяризацию, корректировать дозу препарата у пожилых пациентов не требуется.

При оценке неврологической и офтальмологической безопасности у здоровых добровольцев (получавших перорально тедизолид по 200 мг 1 раз в сутки в течение 10 дней) не было зарегистрировано отклонений от нормы по неврологическим и офтальмологическим показателям [51].

Побочное действие

Тедизолид может вызывать головокружение, тошноту, в редких случаях – сонливость, поэтому может влиять на способность управления транспортными средствами и механизмами.

Результаты клинических исследований эффективности препарата тедизолид при оИКМТ

Применение тедизолида было изучено при острых ИКМТ (целлюлит, рожа, обширные кожные абсцессы и раневые инфекции с площадью поражения ≥ 75 см2) в двух крупных рандомизированных международных многоцентровых двойных слепых исследованиях III фазы («Tedizolid phosphate vs linezolid for treatment of acute bacterial skin and skin structure infections: the ESTABLISH-1 randomized trial», «Tedizolid for 6 days vs linezolid for 10 days for acute bacterial skin and skin-structure infections (ESTABLISH-2): a randomised, double-blind, phase 3, non-inferiority trial»).

Дизайн исследований ESTABLISH-1 (п = 667) и ESTABLISH-2 (п = 666) включал оценку эффективности и переносимости антибактериальной терапии тедизолидом фосфатом в сравнении с другим препаратом из группы оксазолидинонов – линезолидом – у больных ОБИККС [34].

В целом дизайн клинических исследований ESTABLISH-1 и ESTABLISH-2 имел много общего. В исследование ESTABLISH-1 были включены пациенты в возрасте от 18 лет, в исследование ESTABLISH-2 – от 12 лет. Более 60% испытуемых были мужчины, медиана возраста составила 44 года.

В ESTABLISH-1 и ESTABLISH-2, согласно дизайну исследования, были включены больные с клиническими диагнозами: рожа, целлюлит, обширный абсцесс кожи, раневая бактериальная инфекция с площадью поражения ≥ 75 см2. В исследование включали больных с наличием как минимум одного системного или регионального признака инфекционного процесса [лимфаденопатия, повышение температуры тела, изменение лейкоцитарной формулы (лейкоцитоз ≥ 10 000/мкл или лейкопения < 4000/мкл, увеличение числа юных нейтрофилов > 10%) с подозрением или обнаружением грамположительных бактерий в первичном очаге [32–34].

Согласно критериям ОБИККС, у 45% больных были диагностированы рожа и целлюлит, у 25% – обширный абсцесс кожи, у 30% – раневые инфекции. Средняя площадь инфекционного очага у больных, получавших тедизолид и линезолид, была сходной – 347,8 см2.

У 60% больных в обеих группах диагноз был подтвержден выделением из очага поражения не менее одного вида грамположительных бактерий. Частота выделения MRSA и MSSA при ОБИККС была сходной в группах больных, получавших тедизолид и линезолид (табл. 3).

В исследование ESTABLISH-1 и ESTABLISH-2 не включали больных с неосложненными ИКМТ; с инфекционным процессом, вызванным грамотрицательными бактериями; с септицемией, бактериемией и септическим шоком; с инфекциями, ассоциированными с установленным катетером и наличием тромбофлебита, а также пациентов, ранее получавших антибиотики и ингибиторы моноаминоксидазы [32, 34].

Кроме перечисленных нозологических форм в исследования не включали больных с инфекционными осложнениями диабетической стопы, инфицированными ожогами, хроническими язвами и перенесших гнойные хирургические операции [32, 33].

В рамках исследования ESTABLISH-1 пациенты получали антибиотики перорально: тедизолид – 200 мг 1 раз в сутки в течение 6 дней (с 7-го по 10-й день – плацебо), линезолид – 600 мг 2 раза в сутки (суточная доза – 1200 мг) в течение 10 дней. Для соблюдения протокола исследования все участники получали 3 таблетки в день, повышение или понижение дозы запрещалось (рис. 2) [32].

В исследовании ESTABLISH-2 пациенты сначала получали антибиотики внутривенно, далее мог быть осуществлен перевод на пероральный прием (см. рис. 2) [33].

Первичную точку эффективности определяли у всех больных, включенных в исследование (ITT-группа). Вторичную точку эффективности оценивали в mITT-группе, в которую были включены больные с обнаруженными грамположительными бактериями в очаге воспаления и завершившие исследование без серьезных нарушений.

Сводный анализ результатов исследования продемонстрировал сопоставимую эффективность 6-дневного курса тедизолида в сравнении с 10-дневным курсом линезолида по итогам первичной и вторичной точек исследования. Ранний клинический ответ на лечение оценивали как уменьшение площади инфекционного воспаления на 20% и более через 48 –72 ч от начала лечения. Частота клинического успеха в группах тедизолида и линезолида была сходной на момент окончания лечения (87,0 и 87,9% соответственно, значение -0,8%; [-4,4; 2,7]) и сопоставима в катамнезе (на 7–14-й день после окончания лечения, 18–25-й день от начала терапии) (рис. 3) [34].

Среди больных рожей и целлюлитом через 48–72 ч на терапию ответили 81% больных, получавших тедизолид и 80% больных, получавших линезолид. Сопоставимая эффективность препаратов была получена при обширных абсцессах кожи (87 и 90% соответственно). При раневых инфекциях ранний клинический ответ был получен у большего числа больных, получавших тедизолид (92%) по сравнению с получавшими линезолид (82%) (рис. 4) [33].

Доля больных с бактериальной санацией инфекционного очага после курса антибиотикотерапии была одинаково высокой у пациентов, принимавших как тедизолид, так и линезолида. При выделении из очага инфекционного воспаления патогенного S. aureus ранний клинический ответ был достигнут в 85,1 и 80,7% случаев соответственно. Сходные результаты были получены при выделении из очага инфекционного воспаления MRSA (80,9 и 76,0%) и MSSA (88,3 и 84,3%).

Результаты исследований ESTABLISH-1 и ESTABLISH-2 продемонстрировали хорошую переносимость тедизолида, при этом нежелательные явления (НЯ) со стороны желудочно-кишечного тракта (ЖКТ) при приеме тедизолида в сравнении с линезолидом развивались реже (рис. 5) [34].

Доля больных в обеих группах была сопоставима по частоте развития НЯ (43%), которые в большинстве случаев были умеренной или легкой степени тяжести [34]. В группе пациентов, принимавших тедизолид, было 2 летальных исхода, в группе принимавших линезолид – 1. НЯ, которые привели к отмене испытуемого препарата, возникли у 0,5 и 0,9% больных соответственно.

Тромбоцитопения у больных при приеме тедизолида развивалась реже (4,9%), чем при приеме линезолида (10,8%) с уровнем р = 0,0003 на 11–13 день; после приема последней дозы препарата (3,7% на 7-й день для тедизолида и 10,8% на 11-й день для линезолида; р < 0,0001), на протяжении всего периода исследования (6,4 и 12,6%, соответственно; р = 0,0016). Число случаев снижения уровня гемоглобина крови и случаев нейтропении в обеих группах было сопоставимо [34].

Заключение

В настоящее время накоплен положительный опыт применения тедизолида для лечения ИКМТ. Масштабные международные исследования ESTABLISH-1 и ESTABLISH-2 у больных ОБИККС продемонстрировали, что 6-дневный курс лечения тедизолидом по эффективности не уступает 10-дневному курсу лечения линезолидом [32–34]. Доказана хорошая антибактериальная активность тедизолида в лечении заболеваний, вызванных грамположительными бактериями, включая метициллин-резистентные штаммы стафилококков (рожа, целлюлит, абсцесс кожи, раневые инфекции). Тедизолид продемонстировал ранний (через 48–72 ч от начала антибактериальной терапии) клинический ответ, в более 80% случаев коррелировавший с достижением положительного результата по окончании курса лечения [32–34].

В исследованиях ESTABLISH-1 и ESTABLISH-2 тедизолид обладал лучшей переносимостью по сравнению с линезолидом: тромбоцитопения и НЯ со стороны ЖКТ развивались реже [32–34].

Полученные результаты свидетельствуют о том, что новый антибактериальный препарат СИВЕКСТРО® (тедизолид) может быть рекомендован для лечения осложненных ИКМТ, вызванных чувствительными грамположительными микроорганизмами.

References

  1. [Surgical infections of skin and soft tissues. The Russian national recommendations]. Мoscow, 2009. 92 p. (In Russ.).
  2. Zilberberg M.D., Shorr A.F., Micek S.T. et al. Epidemiology and outcomes of hospitalizations with complicated skin and skin-structure infections: implications of healthcare-associated infection risk factors. Infect. Control. Hosp. Epidemiol. 2009; 30(12): 1203–10.
  3. Lipsky B.A., Moran G.J., Napolitano L.M. et al. A prospective, multicenter, observational study of complicated skin and soft tissue infections in hospitalized patients: clinical characteristics, medical treatment, and outcomes. BMC Infect. Dis. 2012; (12): 227 (Р. 1–12) http://www.biomedcentral.com/1471-2334/12/227.
  4. Stevens D.L., Bisno A.L., Chambers H.F. et al. Practice guidelines for the diagnosis and management of skin and soft tissue infections: 2014 update by the infectious diseases society of America. Clin. Infect. Dis. 2014; 59: 147–59.
  5. May A.K. Skin and soft tissue infections. Surg. Clin. North. Am. 2009; 89(2): 403–20.
  6. Kozlov R.S., Krechikova O.I., Ivanchik N.V. et al. Etiology of Nosocomial Bacterial Infections in Russia. Rosnet Study Group. Proceedings of the 48th Interscience Conference on Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 25–28 October, 2008. Washington, DC, USA.; 572, abst. K-4108
  7. Dryden M.S. Complicated skin and soft tissue infection. J. Antimicrob. Chemother. 2010; 65(Suppl. 3): 11135–44.
  8. Di Nubile M.J., Lipsky B.A. Complicated infections of skin and skin structures: when the infection is more than skin deep. J. Antimicrob. Chemother. 2004; 53(Supрl.2): 1137–50.
  9. Ratnikova L.I., Ship S.A. [Modern clinical laboratory and gender features of faces]. Epidemiologiya i infektsionnyye bolezni 2013; (3): 19–21. (In Russ.).
  10. Fokina E.G., Rosly I.M., Potekaeva S.A. [Laboratory evaluation of erysipelatous imflammation]. Èpidemiologiâ i infekcionnye bolezni. Аktual'nye voprosy 2014; (1): 28–32. (In Russ.).
  11. Larru B., Gerber J.S. Cutaneous bacterial infections caused by Staphylococcus aureus and Streptococcus pyogenes in infants and children. Pediatr. Clin. N. Am. 2014; 61: 457–78.
  12. Gunderson C.G., Martinello R.A. A systematic review of bacteriemias in cellulitis and erysipeals. J. Infect. 2012; 64: 148–55.
  13. Eriksson B., Jorup-Ronstrom C., Karkkonen K., Sjoblom A.C., Holm S.E. Erysipelas: clinical and bacteriologic spectrum and serological aspects. Clin. Infect. Dis. 1996; 23(5): 1091–8.
  14. Troitsky V. I., Erovichenkov A.A., Potekaeva S.A., Svistunova T.S., Belaya O.F., Volchkova E.V. [The diversity of pathogens identified in patients with erysipelas]. Epidemiologiya i infektsionnyye bolezni 2015; (2): 34–7. (In Russ.).
  15. Cosgrove S., Sakoulas G., Perencevich E. et al. Comparison of mortality associated with methicillin-resistantand methicillin-susceptible Staphylococcus aureus bacteremia: a meta-analysis. Clin. Infect. Dis. 2003; 36: 53–9.
  16. Ramakrishnan K., Salinas R., Higuita NIA. Skin and soft tissue infections. Am. Family Phys. 2015; 92(6): 474–83.
  17. Dibirov M.D.. Gadzhimuratov R.U.. Lebedev V.V.. Tereshchenko S.A. [The choice of antibiotic therapy in the treatment of purulent complications of diabetic foot syndrome]. Infektsii v khirurgii 2009; 12(11): 113–7. (In Russ.).
  18. Beloborodov V.B. [Modern principles of the use of levofloxacin in the treatment of infections of skin and soft tissues]. Consilium medicum 2009; (1): 38–42. (In Russ.).
  19. Bowler P. Duerden B. Armstrong D. Wound microbiology and associated approaches to wound management. Clin. Microbiol Rev. 2001; 14 (2): 244–69.
  20. Erovichenkov A.A., Domonova E.A., Potekaeva S.A., Svistunova T.S., Matosova S.V., Shipulina O.Yu., Maloletneva N.V., Shipulin G.A., Pak S.G. [Modern molecular biological methods in the study of the etiology of bullous-hemorrhagic forms of erysipelas of the lower extremities]. Epidemiologiya i infektsionnyye bolezni 2016; 14(2): 6–12. (In Russ.).
  21. Bally M., Dendukuri N., Sinclair A., Ahern S.P., Poisson M., Brophy J. A network meta-analysis of antibiotics for treatment of hospitalised patients with suspected or proven meticillin-resistant Staphylococcus aureus infection. Int. J. Antimicrob. Agents 2012; 40(6): 479–95.
  22. Logman J.F., Stephens J., Heeg B. et al. Comparative effectiveness of antibiotics for the treatment of MRSA complicated skin and soft tissue infections. Curr. Med. Res. Opin. 2010; 26(7): 1565–78.
  23. Bounthavong M., Hsu D.I. Efficacy and safety of linezolid in methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) complicated skin and soft tissue infection (cSSTI): a meta-analysis. Curr. Med. Res. Opin. 2010; 26(2): 407–21.
  24. Beibei L., Yun C., Mengli C., Nan B., Xuhong Y., Rui W. Linezolid versus vancomycin for the treatment of gram- positive bacterial infections: meta-analysis of randomised controlled trials. Int. J. Antimicrob. Agents 2010; 35(1): 3–12.
  25. Lin D.F., Zhang Y.Y., Wu J.F. et al. Linezolid for the treatment of infections caused by Gram-positive pathogens in China. Int. J. Antimicrob. Agents 2008; 32(3): 241–9.
  26. Kohno S., Yamaguchi K., Aikawa N. et al. Linezolid versus vancomycin for the treatment of infections caused by methicillin-resistant Staphylococcus aureus in Japan. J. Antimicrob. Chemother. 2007; 60(6): 1361–9.
  27. Food and Drug Administration. Guidance for Industry, Uncomplicated and Complicated Skin and Skin Structure Infections – Developing Antimicrobial Drugs for Treatment. 1998. https://www.fda.gov/ohrms/dockets/98fr/2566dft.pdf
  28. Food and Drug Administration. Guidance for Industry Acute Bacterial Skin and Skin Structure Infections: Developing Drugs for Treatment. 2013. http://www.fda.gov/downloads/Drugs/.../Guidances/.
  29. Picazo J. Betriu C., Rodrhuez-Avial I. et al. Vigilancia de resistencias a los antimicrobianos: Estudio VIRA. Enferm. Infect. Microbiol. Clin. 2002; 20: 503–10.
  30. Rybak J., Roberts K. Tedizolid phosphate: a next-generation oxazolidinone. Infect. Dis. Ther. 2015; (4): 1–14.
  31. Amin A., Cerceo A., Deitelzweig B. et al Hospitalist perspective on the treatment of skin and soft tissue infections. Mayo Clin. Proc. 2014; 1–16.
  32. Prokocimer P., De Anda C., Fang E. et al. Tedizolid phosphate vs linezolid for treatment of acute bacterial skin and skin structure infections: the ESTABLISH-1 randomized trial. JAMA 2013; 309: 559–69.
  33. Moran G.J., Fang E., Corey G.R. et al. Tedizolid for 6 days vs linezolid for 10 days for acute bacterial skin and skin-structure infections (ESTABLISH-2): a randomised, double-blind, phase 3, non-inferiority trial. Lancet Infect. Dis. 2014; 14(8): 696–705.
  34. Shorr A., Lodise T., Corey G.R. et al. Analysis of the phase 3 ESTABLISH trials: tedizolid versus linezolid in acute bacterial skin and skin structure infection. Antimicrob. Agents Chemother. 2015; 59(2): 864–71. DOI: 10.1128/AAC.03688-14.
  35. Im W.B., Choi S.H., Park J.Y., Choi S.H., Finn J., Yoon S.H. Discovery of torezolid as a novel 5-hydroxymethyl-oxazolidinone antibacterial agent. Eur. J. Medicine Chem. 2011; 46(4): 1027–39.
  36. Ye Hui, Lü Xiaoju. Tedizolid for treatment of acute bacterial skin and skin structure infections. Expert Review of Anti-infective Therapy 2015; 13(9): 1051–60.
  37. Sahre M., Sabarinath S., Grant M. et al. Skin and soft tissue concentrations of tedizolid (formerly torezolid), a novel oxazolidinone, following a single oral dose in healthy volunteers. Int. J. Antimicrob. Agents 2012; 40(1): 51–4.
  38. Lemaire S., van Bambeke F., Appelbaum P.C., Tulkens P.M. Cellular pharmacokinetics and intracellular activity of torezolid (TR-700): studies with human macrophage (THP-1) and endothelial (HUVEC) cell lines. J. Antimicrob. Chemother. 2009; 64(5): 1035–43.
  39. Drusano G.L., Liu W., Kulawy R., Louie A. Impact of granulocytes on the antimicrobial effect of tedizolid in a mouse thigh infection model. Antimicrob. Agents Chemother. 2011; 55(11): 5300–5.
  40. Housman S.T., Pope J.S., Russomanno J. et al. Pulmonary disposition of tedizolid following administration of once-daily oral 200-milligram tedizolid phosphate in healthy adult volunteers. Antimicrob. Agents Chemother. 2012; 56(5): 2627–34.
  41. Jones R.N., Moet G.J., Sader H.S. et al. TR-700 in vitro activity against and resistance mutation frequencies among Gram-positive pathogens. J. Antimicrob. Chemother. 2009; 63(4): 716–20.
  42. Flanagan S., McKee E.E., Das D., Tulkens P.M., Hosako H., Fiedler-Kelly J., Passarell J., Radovsky A., Prokocimer P. Evaluation of the Potential of Tedizolid and Linezolid to Affect Mitochondrial Function Using Nonclinical and Pharmacokinetic Assessments. Antimicrob Agents Chemother. 2015; 59(1): 178–85.
  43. Locke J.B., Hilgers M., Shaw K.J. Novel ribosomal mutations in Staphylococcus aureus strains identified through selection with the oxazolidinones linezolid and torezolid (TR-700). Antimicrob. Agents Chemother. 2009; 53(12): 5265–74.
  44. Locke J.B., Morales G., Hilgers M. et al. Elevated linezolid resistance in clinical cfr-positive Staphylococcus aureus isolates is associated with co-occurring mutations in ribosomal protein L3. Antimicrob. Agents Chemother. 2010: 54(12): 5352–5.
  45. Flanagan S.D., Bien P.A., Muñoz K.A. et al. Pharmacokinetics of tedizolid following oral administration: single and multiple dose, effect of food, and comparison of two solid forms of the prodrug. Pharmacotherapy 2014; 34(3):240–50.
  46. Flanagan S., Fang E., Muñoz KA. et al. Single- and Multiple-Dose Pharmacokinetics and Absolute Bioavailability of Tedizolid. Pharmacotherapy 2014; 34: 891–900.
  47. Prokocimer P., Bien P., Munoz K.A. et al. Hematological Effects of TR-701, Linezolid and Placebo Administered for 21 Days in Healthy Subjects. Presented at 48th Interscience Conference on Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 25–28 October, 2008. Washington, DC, USA. Poster F1-2069a.
  48. Flanagan S., Passarell J., Lu Q. et al. Tedizolid population pharmacokinetics, exposure response, and target attainment. Antimicrob. Agents Chemother. 2014; 58(11): 6462–70.
  49. Flanagan S., Bartizal K., Minassian S.L. et al. In vitro, in vivo and clinical studies of tedizolid to assess the potential for peripheral or central monoamine oxidase interactions. Antimicrob. Agents Chemother. 2013; 57(7): 3060–6.
  50. Ong V., Flanagan S., Fang E. et al. Absorption, distribution, metabolism and excretion of the novel antibacterial prodrug tedizolid phosphate. Drug Metab. Dispos. 2014; 42(8): 1275–84
  51. Fang E. Characterization of neurologic and ophthalmologic safety of oral administration of tedizolid for up to 21 days in healthy volunteers. American Journal of Therapeutics 2017; 24 (2): 227– 33.

About the Authors

For correspondence:
Elena G. Fokina, Cand. Med. Sci, Infectious Disease Physician, Scientific Advisory Clinical Diagnostic Center, Central Research Institute of Epidemiology, Russian Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Well-Being
Address: Address: 3a, Novogireevskaya St., Moscow 111123, Russia
Telephone: +7(495) 788-00-02
E-mail: e-fokina@yandex.ru

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.