ISSN 2226-6976 (Print)
ISSN 2414-9640 (Online)

Modern aspects of postinfectious salmonella carrying in children

Milutina L.N., Golubev A.O., Andronova T.M.

1 Central Research Institute of Epidemiology, Russian Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Well-Being, Moscow, Russia; 2 Z.A. Bashlyaeva City Children’s Clinical Hospital, Moscow Healthcare Department, Moscow, Russia; 3 JSC Peptek, Moscow, Russia
The review presents domestic and foreign data on the main contemporary problems of postinfectious Salmonella carrying, especially in children: its epidemiological and social significance; frequency, duration, and influence of various factors (type and properties of the pathogen, age, and premorbid background of children, type of treatment in the acute phase of the disease); immunopathogenetic mechanisms; the effectiveness of different therapies; possible ways for prediction and prevention. It was concluded that it would be advisable to continue research on this topical issue, primarily in relation to the prognosis and prevention of long-term (more than 1.5 months) postinfectious salmonella carrying in children.

Keywords

salmonella
children
post-infectious bacteria carrying
frequency
immunopathogenesis
treatment
prevention
prediction

Острые кишечные инфекции (ОКИ) продолжают занимать ведущее место в инфекционной патологии детского возраста, уступая по массовости и экономическому ущербу только острым респираторным заболеваниям и гриппу [1, 2]. В этиологической структуре ОКИ в настоящее время в нашей стране, как и во всем мире, выделяются вирусные диареи, однако из бактериальных инфекций за последние годы на первое место вышли сальмонеллезы, заболеваемость которыми, по данным официальной статистики за 2017 г., превышает заболеваемость шигеллезами в 4,9 раза: 22,07 против 4,54 на 100 тыс. населения соответственно [3]. Показатель заболеваемости детей до 14 лет в 2017 г. был выше общепопуляционного в 2,7 раза (62,33 против 22,07), его максимальное значение отмечено в возрастной группе 1–2 лет (119,6 на 100 тыс. детей данного возраста). За последние 40 лет произошла эволюция клинико-эпидемиологических закономерностей сальмонеллезов у детей1, что обусловлено сменой доминирующего серовара с S. Typhimurium на S. Enteritidis, а в связи с этим – и контингента заболевших (преобладание детей 1–7 лет, не организованных в детские коллективы), и путей инфицирования (преимущественно пищевой в семейных очагах) [4–6]. Одной из важных проблем современных сальмонеллезов у детей является постинфекционное бактерионосительство, особенно длительное (свыше 1,5 мес.).

Бактерионосительство – это распространенная форма функционирования биологической системы «паразит–хозяин», одна из природных иллюстраций закона единства и борьбы противоположностей, где параллельная эволюция хозяина и паразита – основной инструмент совершенствования самой системы [7, 8]. Это своеобразная форма симбиоза патогенных микроорганизмов и организма хозяина, приводящая к длительному персистированию возбудителя без клинических проявлений болезни, которая имеет большую эпидемиологическую значимость: способствует сохранению возбудителя в межэпидемический период и является дополнительным механизмом развития эпидемического процесса в связи с возможностью трансформирования его в манифестную форму болезни под влиянием разных факторов [9, 10]. Например, отмечено, что операции на открытом сердце у бактерионосителей – детей младшего возраста могут приводить к сальмонеллезной септицемии [11]. Обследование, тем более повторного, всех детей после перенесенной инфекции в стационарах, как правило, не проводится, а в амбулаторных условиях оно не предусмотрено существующими нормативными документами2, что приводит к недовыявлению постинфекционного бактерионосительства со всеми вытекающими последствиями.

Поэтому изучение истинной частоты и особенно длительности постинфекционного выделения сальмонелл имеет не только эпидемиологическое, но и социальное значение. Сведения об этом в доступной литературе, как зарубежной, так и отечественной, весьма немногочисленны, противоречивы и зависят от возраста пациентов. Так, по данным зарубежных исследователей, через 5 мес. после постановки диагноза «сальмонеллез» 4% детей младше 6 мес. продолжали выделять сальмонеллы, а через год после перенесенного сальмонеллеза выделение возбудителя сохраняется у 2,6% детей младше 5 лет и менее чем у 1% детей старше 5 лет и взрослых [12, 13]. Однако в зарубежной литературе имеются и единичные работы, свидетельствующие о большей частоте длительного бактериовыделения сальмонелл – от 25 до 65% [14–16], в том числе, до 32% у детей первого года жизни [17, 18]. Так, у 60% детей в возрасте младше 5 лет обнаружено выделение сальмонелл через 20 нед. после клинического выздоровления, а около 5% детей продолжали выделять этот микроорганизм и через год [19, 20].

Данные отечественных авторов о частоте длительного бактериовыделения после перенесенного сальмонеллеза у детей еще более разноречивы – от 0,1 до 44,1% [8, 21–24 ], что связано по-видимому, с разной кратностью контрольного бактериологического обследования. При этом установлено влияние на частоту и длительность постинфекционного бактериовыделения не столько вида, сколько антибиотикорезистентности возбудителя. Так, в 60–70- е годы XX века частота выделения свыше 3 нед. S. Typhimurium чувствительных и резистентных к антибиотикам, составляла 4,7 и 13,4% соответственно3, а в начале XXI века при госпитальном сальмонеллезе S. Typhimurium регистрировали у 41,7% больных, в том числе свыше 3 мес. – у 12,5% [22, 25]. Но и в современных условиях при сальмонеллезе, вызванном S. Typhimurium, все еще доминирующем в южных регионах страны, повторное бактериовыделение, по данным Л.У. Улухановой, выявляется у половины детей раннего возраста после купирования клинических проявлений болезни и сохраняется до 1,5 мес. и более у 1/3 из них4.

При сальмонеллезе, вызванном S. Enteritidis, также чаще выявляют повторное бактериовыделение резистентных, чем чувствительных к антибиотикам штаммов – в 33,3 и 13,0% случаев соответственно1, что подтверждают и работы других авторов [25]. В наших предыдущих исследованиях5 было показано, что реконвалесцентное бактерионосительство наблюдалось в годы преобладания резистентных штаммов чаще, чем в годы преобладания чувствительных (2/3 и 1/3 соответственно). При этом при повторном обследовании детей, выписанных из стационара, оказалось, что у 20% из них продолжают высеваться сальмонеллы в течение 1,5 мес. и дольше и значительно чаще (42,1%) – при неадекватном лечении (повторные курсы антибиотиков) [23]. К таким же выводам пришли и другие авторы, показавшие, что период бактериовыделения может увеличиваться из-за неадекватного применения антибиотиков [25–27]. Так, М.К. Бехтерева и соавт. [25] отмечают, что реконвалесцентное бактериовыделение Salmonella spp. зарегистрировано у 47,9% детей, получавших антибактериальную терапию. При этом S. Enteritidis была выделена в 79,6% случаев.

Установлено, что в формировании постинфекционного бактерионосительства играют роль особенности макроорганизма (генетическая предрасположенность, состояние желчного пузыря), свойства возбудителя (антибактериальная резистентность, антилизоцимная активность, способность разрушать комплемент), а также особенности взаимодействия сальмонелл с клетками иммунной системы, приводящие к их персистированию в эпителиоцитах.

Известно, что аномалии и заболевания желчного пузыря, приводящие к застою желчи, способствуют формированию длительного бактерионосительства, поскольку сальмонеллы проникают в желчный пузырь, а желчь является хорошей питательной средой для них [6, 28]. В эксперименте было установлено, что сальмонеллы способны не только сохраняться в эпителии желчного пузыря [29], но и формировать биопленки – патогенетический фактор хронизации инфекционных процессов, поскольку интеграция бактерий в сообщество обеспечивает им большую устойчивость к воздействию факторов внешней среды, включая антибактериальные препараты [30, 31]. Более того, формирование сальмонеллами биопленки и их взаимодействие с корпускулярными компонентами желчи приводят к дисбалансу ее коллоидного равновесия, что может привести к образованию желчных камней [29, 32].

Формированию реконвалесцентного бактерионосительства способствует и нарушение микробиоценоза кишечника [33].

В лабораторных исследованиях на мышах были получены данные о том, что при наличии антигена гистосовместимости HLA-B27 снижается синтез NO клетками, что способствует персистированию сальмонелл (S. Enteritidis) [34]. Установлено также, что наличие антигена HLA-B27 не только может сделать людей более восприимчивыми к сальмонеллезной инфекции [35], но и способствует персистированию сальмонелл [34].

Присутствие антигена А19 также обусловливает риск формирования длительного реконвалесцентного бактерионосительства S. Enteritidis и S. Typhimurium у детей [36].

Важнейшим свойством сальмонелл является их антилизоцимная активность. Экспериментальным путем на животных, культуре ткани и методом популяционного анализа доказано, что антилизоцимный признак можно рассматривать как маркер персистенции бактерий, способных к внутриклеточному паразитированию. Для персистирования бактерий имеет значение и их липополисахаридный профиль. Установлено, что О-антиген S. Minnesota напрямую разрушал действие комплемента, мешая прилипанию мембраноатакующего комплекса (С5в- 9) в критических участках бактериальной стенки [7].

Эксперименты in vitro и in vivo показали, что S. Typhimurium способны не только выживать внутри кишечного эпителия [37], но и перемещаться из инфицированных в неинфицированные эпителиальные клетки с помощью эффекторного белка PipB2 [38]. Установлено, что сальмонеллы могут не только разрушать макрофаги, но и размножаться внутри них и сохраняются в фагосоме, где формируют устойчивую вакуоль с мембраной в непосредственной близости к бактерии. Это увеличивает сопротивление антибактериальным пептидам и окислительному стрессу, а изменение фагосомы увеличивает внутриклеточное выживание и уменьшает распознавание сальмонелл компонентами врожденного иммунитета [39].

Установлено, что санация от сальмонелл осуществляется при участии NK-клеток, продуцирующих IFN-γ; Т-хелперов 1-го типа, продуци­рую­щих IL-2; макрофагов, продуцирующих IL-15; инфицированных сальмонеллами макрофагов, секретирующих IL-12, IL-18 [40].

Сальмонеллы также способны снижать иммунный ответ человека, нарушая функции дендритных и Т-клеток [41].

В формировании реконвалесцентного бактерионосительства имеет место нарушение регуляции локального иммунного ответа и дефицит местного иммунитета, о чем свидетельствует низкое содержание секреторного IgA (sIgA), свободного секреторного компонента (SC), антител к О-антигену сальмонелл, лактоферрина, лизоцима, определяемых в слюне и копрофильтратах; низкий уровень цитокинов IL-1Ra (антагониста IL-1) и IL-4 в копрофильтратах и, напротив, высокий уровень IgM, IgG (за счет IgG1 и IgG4) цитокинов IL-6, IL-8, IL-4, IFN-ɣ [33, 42]. Однако в этих работах возрастные особенности иммунного ответа при длительном бактерионосительстве сальмонелл не освещены.

В доступной литературе имеются лишь единичные работы, посвященные изучению иммунного ответа у детей с длительным бактериовыдением сальмонелл6. У них установлено нарушение всех звеньев иммунного ответа: фагоцитоза (снижение ХИ), гуморального звена (сочетанное снижение уровней IgG и IgM), субпопуляций лимфоцитов (снижение количества CD4+-лимфоцитов и иммуннорегуляторного индекса) и особенно – подавление миграции лейкоцитов в РТМЛ (при специфической и неспецифической стимуляции) [23].

Нерешенными остаются и вопросы терапии детей с длительным бактериовыделением, поскольку общепринятые методы (повторные курсы антибиотиков) не только недостаточно эффективны, но и способствуют увеличению сроков санации от возбудителя [6, 23, 25–27]. Поэтому представляется не­убедительной рекомендация Е.В. Коцарь и соавт. [43], предложивших лечить сальмонеллезных бактерионосителей (без указания возраста) антибиотиками только на основании высокой чувствительности к ним 20 изученных штаммов возбудителя (без указания сероваров и без представления результатов лечения).

Бактерионосителям в качестве этиотропных средств назначают специфические бактериофаги [6, 21, 28, 44], однако они высокоэффективны, особенно при сочетании с желчегонными средствами, только в острую фазу болезни: их санирующая эффективность у детей может достигать 72–98% [28], а у взрослых в очагах госпитального сальмонеллеза они позволяют сократить частоту бактерионосительства сальмонелл в 6–20 раз [45]. Однако при длительном бактерионосительстве бактериофаги, как и антибиотики, малоэффективны [23].

Учитывая сказанное выше, наиболее целесооб­разно назначение этим больным иммунокорригирующих препаратов. Однако данные об этом виде терапии весьма немногочисленны и касаются, преимущественно, лечения в острой фазе болезни и в период ранней реконвалесценции.

Результаты проведенных нами исследований показали эффективность КИП – отечественного энтерального комплексного иммунноглобулинового препарата, содержащего IgG, IgM, IgA и специфические антитела к энтеробактериям, в том числе сальмонеллам, и способного блокировать рецепторы микробных клеток, предотвращая их адгезию и размножение в эпителиоцитах. Санирующий эффект при бактериовыделении S. Typhimurium в период реконвалесценции был достигнут у 85% детей против 55,2% в контрольной группе7. Установлено также, что включение кипферона в комплексную терапию сальмонеллеза, вызванного S. Typhimurium, в острую фазу болезни позволило увеличить долю детей с санацией от возбудителя с 50 до 71%, что сопровождалось и нормализацией параметров иммунного гомеостаза [46].

Имеются единичные данные о санирующей эффективности включения в терапию взрослых сальмонеллезных реконвалесцентных бактерионосителей (S. Enteritidis), наряду с пробиотиками и витаминами, полиоксидония – активного высокомолекулярного соединения с выраженной иммуномодулирующей активностью [33, 47]. Было установлено сокращение в 1,5 раза сроков бактериовыделения и ускорение нормализации микробиоценоза толстой кишки; стимулирующее влияние на показатели местного иммунитета (sIgA, SC, общий IgA, лизоцим, титры специфических антител к О-антигену сальмонелл); увеличение количества отдельных субпопуляций лимфоцитов (CD16, CD56, CD95) и изменение содержания цитокинов с восстановлением баланса Th1- и Th2-цитокинов, а также функциональной активности нейтрофилов. В условиях in vitro выявлено подавление полиоксидонием антикомплементарной активности сальмонелл [33, 47].

В нескольких опубликованных работах подтверждена эффективность включения в терапию сальмонеллезов у детей циклоферона – низкомолекулярного индуктора IFN-α и IFN-γ, которые обладают не только иммуномодулирующим и противовоспалительным действием, но и подавляют факторы персистенции грамотрицательных микроорганизмов, в том числе сальмонелл (их антилизоцимную и антикомплементарную активность) [48, 49]. Установлено, что циклоферон способствует более редкому формированию реконвалесцентного бактерионосительства сальмонелл [50] и освобождению от возбудителя у 95% получавших его пациентов [51].

Однако данных о применении вышеописанных препаратов (КИП, кипферона, полиоксидония, циклоферона) при длительном реконвалесцентном бактерионосительстве сальмонелл нет, а критерии истинного выздоровления авторами не указаны.

Из многочисленных существующих на отечественном фармацевтическом рынке иммуномодуляторов наиболее перспективными являются бактериальные лизаты – иммуномодуляторы микробного происхождения, поскольку именно нормальная микрофлора определяет становление, развитие и поддержание иммунитета человека, а среди них – наиболее очищенного полусинтетического отечественного препарата ликопид. В его основе минимальный биологически активный фрагмент пептидогликана клеточной стенки всех известных бактерий с хорошо изученным механизмом действия (активация всех звеньев иммунного ответа через макрофагально-моноцитарную систему, как это происходит в естественных условиях) [52]. Препарат разрешен к применению у детей с 1996 г. и успешно применяется для лечения самых разных инфекций: ОРВИ у часто болеющих детей [53], герпетических инфекций у детей раннего возраста [54], а также для санации от микобактерий туберкулеза [55] и Helicobacter pylory [56] у взрослых и условно-патогенных микроорганизмов и Candida albicans [57] – у детей.

В исследовании Л.У. Улухановой ликопид был использован в составе комплексной терапии в острой фазе сальмонеллеза, вызванного S. Typhimurium8. Санирующий эффект получен у 81% детей, а при последовательном применении после кипферона – у 90% детей (против 50% больных, не получавших иммунопрепаратов).

Имеется лишь одно исследование, в котором применен ликопид для лечения детей с длительным постинфекционным сальмонеллезным бактерионосительством, у которых предыдущее лечение антибиотиками, бактериофагами и КИП оказалось неэффективным [23, 58]. Изучена санирующая эффективность ликопида у 28 детей, перенесших сальмонеллез и продолжавших выделять сальмонеллы после курса комплексной терапии при отсутствии дисфункций со стороны желудочно-кишечного тракта. Длительность бактериовыделения к моменту начала терапии ликопидом у большинства детей составляла 1,5 мес. и более, в том числе почти у половины – более 3 мес. Дети получали 3 курса препарата по 1 мг 1 раз в день под язык в течение 10 дней с перерывом в 20 дней. Освободились от возбудителя 96,4%, при этом критерии выздоровления были жесткими: 3 отрицательных результата бактериологического посева, взятых подряд, и 4-й – через месяц. Освобождение от возбудителя сопровождалось увеличением фагоцитарного индекса нейтрофилов и моноцитов, повышением иммунорегуляторного индекса и показателей миграции лейкоцитов в реакции торможения миграции лейкоцитов (РТМЛ).

Поскольку длительное (свыше 1,5 мес.) постинфекционное бактериовыделение сальмонелл у детей достаточно распространено, но недовыявляется, имеет не только эпидемиологическую, но и социальную значимость (особенно для детей, посещающих детские дошкольные учреждения, и их родителей), а терапия представляет значительные трудности и требует длительного времени, еще более важной проблемой является его прогнозирование и профилактика. Однако сведений по этому вопросу очень мало.

Так, О.В. Бухарин и соавт.9, проанализировав известные ранее способы прогнозирования длительного бактериовыделения сальмонелл у взрослых, показали их недостатки. Показатели, выявляющие снижение иммунологической защиты в острую фазу болезни [уровень свободных и связанных в иммунные комплексы копроантител в РНГА (реакции непрямой гемагглютинации); уровень циркулирующих лимфоцитов, сенсибилизированых к сальмонеллезному О-антигену в реакции антигенспецифического розеткообразования; снижение индекса завершенного фагоцитоза, индекса литической активности сыворотки крови, мононуклеарного индекса; недостаточное нарастание специфических антител] учитывают биологические свойства сальмонелл не полностью. Кроме того, информативность этих показателей выявляется только на 3–4-й неделе заболевания.

Недостаток метода определения антилизоцимной активности чистой культуры сальмонелл, выделенной от больного, связан с тем, что гидролитическое расщепление лизоцимом пептидогликанового слоя клеточной стенки характерно преимущественно для грамположительных бактерий и менее – для грамотрицательных, в том числе сальмонелл. Авторы предложили метод прогнозирования реконвалесцентного бактерионосительства сальмонелл путем определения уровня лактоферрина в копрофильтратах и антилактоферриновой активности сальмонелл10. Лактоферрин – неспецифический клеточный протектор на поверхности кишечного эпителия и фаголизомах нейтрофильных гранул – оказывает бактериостатическое действие. Кроме того, косвенно, с помощью потенцированного действия лактоферрина, сальмонеллы с высокой антилизоцимной активностью способны инактивировать и большое количество лизоцима в клетках и тканях. Пациенты, у которых в острую фазу болезни выявляли дефицит лактоферрина в копрофильтратах (460–1400 нг/мл) и высокую антилактоферриновую активность сальмонелл (7,8–13,0 нг), являются группой риска реконвалесцентного бактерионосительства. Авторы показали эффективность метода у 93,8% взрослых, больных сальмонеллезом. Уровень лактоферрина в копрофильтрате у реконвалесцентных бактерионосителей по сравнению с другими пациентами был ниже в 2,3 раза в период разгара болезни и в 3,7 раза – в период реконвалесценции 9,11.

В работе Л.Н. Милютиной и соавт. [58] впервые предложен алгоритм ведения детей после перенесенной сальмонеллезной инфекции для своевременного прогнозирования, диагностики, профилактики и лечения реконвалесцентного бактерионосительства сальмонелл (см. рисунок) и дифференцированный подход к количеству обследований таких детей на сальмонеллез. Детям, отнесенным к группе риска по затягиванию санации от возбудителя (с заболеваниями, вызванными полирезистентным к антибиотикам штаммами сальмонелл; с сочетанным течением сальмонеллеза с вирусными и другими инфекциями; с множественными отягощающими факторами в анамнезе, в том числе, избыточно лечившимся антибиотиками) рекомендуется не однократное, а 3-кратное бактериологическое обследование после клинического выздоровления (учитывая дискретность выделения возбудителя) и проведение 1 иммунологического теста (РТМЛ). При положительных результатах обоих или одного из этих методов обследования рекомендуется проведение иммунной терапии ликопидом (тремя курсами). Детям, не отнесенным к группе риска, достаточно 1 бактериологического обследования, а при наличии положительного результата – 1–2 курсов лечения по схеме: бактериофаг + КИП + желчегонные препараты и только при отсутствии эффекта рекомендуются 3 курса иммунотерапии. Однако данных о результатах практического применения этого алгоритма пока нет.

Заключение

Постинфекционное бактерионосительство сальмонелл – достаточно распространенное явление, которое имеет эпидемиологическую и социальную значимость, особенно у детей, но недовыявляемое; методы лечения, используемые в широкой практике, неэффективны, а прогнозирование и иммунопрофилактика реконвалесцентного носительства, особенно длительного, недостаточно разработаны, не внедрены в практику. В связи с этим целесооб­разно продолжать исследования в этом направлении, а также широко применять уже разработанные критерии прогнозирования для накопления опыта ранней профилактики длительного постинфекционного бактерионосительства сальмонелл, прежде всего у детей.

References

  1. Onishchenko G.G. [Maintaining the health of the nation – the fight against infectious and parasitic diseases]. Infektsionnye bolezni 2007; (5): 10–4. (In Russ.).
  2. Onishchenko G.G. [Incidence of аcute intestinal infections in the Russian Federation]. Immunologiya 2008; (1): 18–23. (In Russ.).
  3. [Information on infectious and parasitic diseases in January–December 2017 in the Russian Federation]. Detskiye infektsii 2018; 17(2): 5. (In Russ.).
  4. Rozhnova S.Sh., Frolochkina T.I., Golovanova M.A. [Epidemiological situation on salmonellosis in Russia at the turn of the century. Materials of the VIII Congress of the All-Russian Scientific and Practical Society of Epidemiologists, Microbiologist, and Parasitologists]. Мoscow, 2002; 1: 91–2. (In Russ.).
  5. Milutina L.N., Rozhnova S.Sh. [Evolution of clinical and epidemiological characteristics of salmonellosis in children. In: Proceedings of the scientific conference «Research in the field of applied sciences»]. Arad, Israel: Institute for Applied Research, 2013; 116–21. (In Russ.).
  6. Milutina L.N., Rubleva O.V., Golubev A.O., Ploskireva A.A., Gorelov A.V. [A practical guide to the diagnosis and treatment of salmonellosis in children]. Moscow, 2014. 93 p. (In Russ.).
  7. Bukharin O.V., Usvyattsev B.J. [Bacteriocarrier (medical and environmental aspects)]. Ekaterinburg: Uralskoye otdeleniye Rossiyskoy akademii nauk, 1996. 203 p. (In Russ.).
  8. Bukharin O.V. [Persistence of bacterial pathogens as a physiological phenomenon]. Vestnik Moskovskogo universiteta. Seriya 16. Biologiya. 2008; (1): 6–13. (In Russ.).
  9. Belyakov V.D., Golubev D.B., Klinskaya G.D. et al. [Self-parasite systems]. Moscow: Medicine 1987; 240 p. (In Russ.)
  10. Yakovlev A.A. [On possible mechanisms of development of the epidemic process].. Èpidemiologiâ i infekcionnye bolezni. Аktual’nye voprosy 2014; (6): 52–6. (In Russ.).
  11. Danilowicz D., Posnock E., Chase R., Spencer F.C. Salmonella Septicemia after open heart surgery in an asymptomatic carrier. Am. J. Cardiol. 1974; 34(7): 864–7.
  12. Berezin E.N., Carvalho E.S., Farhat C.K., Mimica I.M., Mimica L., Raphaelian T.A. Persistence of colonization time in patients infected by Salmonella. AMB Rev. Assoc. Med. Bras. 1990; 36(2): 100–6.
  13. Marri D., еd. [Infectious diseases in children]. 21 ed. Мoscow: Praktika, 2006. 928 p. (In Russ.).
  14. Svenungsson B., Goffe G. Persistent excretion of Salmonella in foreign-born adopted and native Swedish children. Scand. J. Infect. Dis. 1990; 22: 37–42.
  15. Fabre L., Delaune A., Espié E., Nygard K., Pardos M., Polomack L.:et al. Chromosomal integration of the extended-spectrum b-lactamase gene blaCTX-M-15 in Salmonella enterica serotype Concord isolates from internationally adopted children. Antimicrob. Agents Chemother. 2009; 53: 1808–16.
  16. Boisrame-Gastrin S., Tande D., Munck M.R., Gouriou S., Nordmann P., Naas T. Salmonella carriage in adopted children from Mali: 2001–08. J. Antimicrob. Chemother. 2011; 66: 2271–76.
  17. Nelson S.J., Granoff D. Salmonella gastroenteritis in the first three months of life. Clinical Pediatrics 1982; 21: 709–12.
  18. Kafetzis D.A., Maltezou H.C., Zafeiropoulou A., Attilakos A., Stavrinadis C., Foustoukou M. Epidemiology, clinical course and impact on hospitalization costs of acute diarrhea among hospitalized children in Athens, Greece. Scand. J. Infect. Dis. 2001; 33: 681–5.
  19. Buchwald D.S., Blaser M.J. A review of human salmonellosis, II: duration of excretion following infection with nontyphi Salmonella. Rev. Infect. Dis. 1984; 6: 345–56.
  20. Schutze G.E., Kirby R.S., Flick E.L. Epidemiology and Molecular Identification of Salmonella Infections in Children. Archives of Pediatrics and Adolescent Medicine 1998; 152: 659–64.
  21. Ivanova V.V., ed. [Infectious diseases in children]. Мoscow: Meditsinskoye informatsionnoye agentstvo, 2002. 928 p. (In Russ.).
  22. Lavrinovich D.N., Semenov V.M., Dmitrachenko T.I. [Clinical features of hospital salmonellosis]. Vestnik Vitebskogo gosudarstvennogo meditsinskogo universiteta 2007; 6(3): 1–10. (In Russ.).
  23. Milutina L.N., Golubev A.O., Guryeva O.V. et al. [On the issue of post-infectious bacteriocarrier in children with salmonellosis and ways of its correction]. Zhurnal infektologii 2010; 2(3): 126–7. (In Russ.).
  24. Kirillova T.A., Khabudayeva V.A., Kiklevich V.T. [Clinical and epidemiological features of salmonellosis caused by Salmonellae oranierburg. Proceedings of the IV Annual All-Russian Congress on Infectious Diseases]. Мoscow, 2012; 179. (In Russ.)
  25. Bekhtereva M.K., Tikhomirova O.V., Lachkova L.V., Kvetnaya A.S. [Features of the course of salmonellosis in children at the present stage and tactics of therapy. Materials of the All-Russian scientific-practical conference «Therapy of infectious diseases in children: modern ideas and unresolved issues»]. Saint-Petersburg, 2005; 24. (In Russ.).
  26. Asercoff B., Benett J.V. Effect of antibiotic therapy in acute salmonellosis on the faecalexcretion of salmonellae. New End. J. Med. 1969; 281: 636–400.
  27. Robert-Koch-Institut und Bundesinstitut für gesundhetlichen Verbraucherschutz und Veterinärmedizin (Hrg.). Salmonellose – Erkennunag, Bekämpfung, Verhütung. Merkblatt für Ärzte. Bundesgesungheitsbl. 1997; (1): 36–8.
  28. Vorotyntseva N.V., Mvazenkova L.N. [Acute intestinal infections in children]. Moscow: Meditsina 2001; 477. (In Russ.).
  29. Gonzalez-Escobedoa G., Gunn J.S.. Gallbladder Epithelium as a Niche for Chronic Salmonella Carriage. Infect. Immun. 2013; 81(8): 2920–30.
  30. Costerton J.W., Stewart P.S., Greenberg E.P. Bacterial Biofilms: A Common Cause of Persistent Infections. Science 1999; 284: 1318–22.
  31. Ponomareva A.L., Eskova A.I., Bakunina M.S. [Features of biofilm formation by bacteria of the genus Salmonella. Actual Questions of modern medicine. Materials of the II Far Eastern Medical Youth Forum]. Khabarovsk: Izdatelstvo Dalnevostochnogo gosudarstvennogo meditsinskogo universiteta 2018; 55–6. (In Russ.). http://www.fesmu.ru/elib/Book.aspx?id=206725
  32. Didenko L.V., Andreyevskaya S.G., Tiganova I.G., Smirnova T.A.. Romanova Yu.M. [The role of Salmonella in biliary lithogenesis]. Eksperimentalnaya i klinicheskaya gastroenterologiya 2009; (3): 44–7.
  33. Chaynikova I.N., Smolyagin A.I., Skachkov M.V., Kalinina T.N., Bucharin O.V. [Local immunity and intestinal microflora in salmonella bacteriocarrier and approaches to its rehabilitation]. Meditsinskaya immunologiya 2008; 10(1): 35–42. (In Russ.).
  34. Kvetnaya A.S., Bekhtereva M.K., Zheleznova L.I., Kalinogorskaya O.S. [The use of cycloferon in the treatment of salmonella and yersiniosis infections in children]. Antibiotiki i khimioterapiya 2012; 57(3–4): 9–16. (In Russ.).
  35. Virtala M., Kirveskari J., Granfors K. HLA-B27 Modulates the Survival of Salmonella Enteritidis in Transfected L Cells, Possibly by Impaired Nitric Oxide Production. Infect. Immun. 1997; 65(10): 4236–42.
  36. Rohekar S., Tsui F.W., Tsui H.W., Xi N., Riarh R., Bilotta R. et al. Symptomatic acute reactive arthritis after an outbreak of salmonella. J. Rheumatol. 2008; 35(8): 1599–602.
  37. Grigorovich M.S., Yurlova E.V., Okatova A.V. [Clinical and epidemiological characteristics and some features of enzymatic homeostasis in children with Salmonella infection]. Detskiye infektsii 2011; (3): 27–32. (In Russ.).
  38. Duerr C.U., Zenk S.F., Chassin C., Pott J., Gutle D. et al. O-Antigen Delays Lipopolysaccharide Recognition and Impairs Antibacterial Host Defense in Murine Intestinal Epithelial Cells. PLoS Pathog. 2009; 5(9): e1000567. DOI:10.1371/journal.ppat.1000567.
  39. Szeto J., Namolovan A., Osborne S.E., Coombes B.K., Brumell J.H. Salmonella-Containing Vacuoles Display Centrifugal Movement Associated with Cell-to-Cell Transfer in Epithelial Cells. Infect. Immun. 2009; 77(3): 996–1007.
  40. Prost L.R., Sanowar S., Miller S.I. Salmonella sensing of anti-microbial mechanisms to promote survival within macrophages. Immunol. Rev. 2007; 219: 55–65.
  41. Lapaque N., Walzer T., Méresse S., Vivier E., Trowsdale J. Interactions between human NK cells and macrophages in response to Salmonella infection. J. Immunol. 2009; 182(7): 4339–48.
  42. Bueno S.M., González P.A., Schwebach J.R., Kalergis A.M. T-cell immunity evasion by virulent Salmonella enterica. Immunol. Lett. 2007; 111(1): 14–20.
  43. Kotsar E.V., Krivulya A.D., Golubka O.V. [Current efficacy of antibiotic therapy for Salmonella bacteriocarrier]. Arkhivarius 2016; (11): 22–4. (In Russ.).
  44. Chainikova I.N. [Informative immunological parameters and biological properties of Salmonella in predicting the outcome salmonellosis infection]. Vestnik Orenburgskogo gosudarstvennogo universiteta 2005; (12): 58–62. (In Russ.).
  45. Timchenko V.N., ed. [Infectious diseases in children]. Saint-Petersburg: SpetsLit 2008; 576. (In Russ.).
  46. Akimkin V.G., Darbeyeva O.S., Kolkov V.F. [Bacteriophages: historical and modern aspects of their application: experience and prospects]. Klinicheskaya praktika 2010; (4): 48–54. (In Russ.).
  47. Ulukhanova L.U., Magomedov A.M. [The clinical efficacy of the immunomodulator «Kipferon» in the complex treatment of salmonellosis Typhimurium in children. Collection of scientific papers «Dagestan Medical Academy 75 years»]. Makhachkala: Izdatelstvo Dagestanskoy gosudarstvennoy meditsinskoy akademi, 2007; 61–3. (In Russ.).
  48. Chaynikova I.N., Smolyagin A.I., Ivanova A.S., Kalinina T.N., Skachkov M.V., Valyshev A.V., Bukharin O.V. [The effectiveness of the use of polyoxidonium for the rehabilitation of salmonella bacteria carriers]. Immunologiya 2004; 26(6): 339–43. (In Russ.).
  49. Bukharin O.V., Kirillov D.A., Sheyenkov N.V., Kirillov V.A. [Effect of cycloferon on the biological properties of bacterial intracellular pathogens]. Zhurnal mikrobiologii. epidemiologii i immunobiologii 2005; (3): 8–10. (In Russ.).
  50. Romantsov M.G. [Experience of using cycloferon in the treatment of intestinal infections in children]. Saint-Petersburg: Polysan , 2010; 15. (In Russ.).
  51. Starikova I.A. [The effectiveness of cycloferon in acute intestinal infections in children]. Vrach 2004; (7): 54–5. (In Russ.).
  52. Kozlov I.G., Аndronova T.M. [Medicinal effects through receptors of innate immunity. Collected articles «Modern ideas about the molecular mechanism of action glyukozaminilmuramildipeptida (GMDP)». Moscow, 2006; 27–37. (In Russ.).
  53. Kiryuhin A.V., Parfenov N.A., Maksimova Т.А., Lvov A.V., Parfenova N.A., Shenogina N.A., Chumakova M.M. [Optimization of treatment and often chronically ill children: licopid immunotherapy]. Rossiyskoy pediatricheskiy zhurnal 2001; (5): 27–9. (In Russ.).
  54. Ivanovа V.V., Ivanovа M.V., Levinа A.S., Zakina A.A., Tikhomirova O.V.. Zheleznikova G.F.. Aksenov O.A.. Komeleva E.V. [Modern principles of diagnosis and treatment of perinatal herpesvirus infections]. Rossiyskiy vestnik perinatologii i pediatrii 2008; (1): 10–8. (In Russ.).
  55. Svistunova A.S., Arshinova S.S., Klimova S.V. и др. [Clinical and immunological efficacy of the Likopid immunomodulator in pulmonary tuberculosis]. Immunologiya 2000; (5): 59–62. (In Russ.).
  56. Konorev M.R. [The effect of Licopid on the persistence of Helicobacter pylori in the gastric mucosa of patients with chronic gastritis]. Immunologiya. allergologiya. Infektologiya 2004; (2): 59–62. (In Russ.).
  57. Korovina N.A., Zakharova I.S., Kalinina M.V., Berezhnaya I.V. [Study of the effectiveness of Licopid for the correction of intestinal microbiocenosis disorders in children aged 1–7 years. Collection of scientific articles «Licopid in pediatric practice»]. Мoscow, 2006; 82–6. (In Russ.).
  58. Milutina L.N., Golubev A.O. [Experience with Likopid for sanitation of postinfectious Salmonella carriage in children]. Rossiyskiy vestnik perinatologii i pediatrii 2015; 6(4): 100–7. (In Russ.).

About the Authors

Lyudmila N. Milutina, MD, Leading Researcher, Clinical Department of Infectious Diseases, Central Research Institute of Epidemiology, Russian Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Well-Being; Moscow, Russia; e-mail: milutina.ln@yandex.ru
Andrey O. Golubev, Cand. Med. Sci., Pediatrician, Z.A. Bashlyaeva City Children’s Clinical Hospital, Moscow Healthcare Department, Moscow, Russia; е-mail: ronin10000@mail.ru
Tatiana M. Andronova, PhD in Chemistry, Scientific Advisor, JSC Peptek, Moscow, Russia; е-mail: peptek@peptek.ru

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.