ISSN 2226-6976 (Print)
ISSN 2414-9640 (Online)

Oropharyngeal microbiota in HIV infection: trends and problems in the epoch of antiretroviral therapy

Matuzkova A.N., Pshenichnaya N.Yu., Aleshukina A.V., Ryndich A.A., Suladze A.G., Tverdokhlebova T.I., Zhuravlev A.S., Dontsov D.V.

1) Rostov Research Institute of Microbiology and Parasitology, Russian Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Well-Being, Rostov-on-Don, Russia; 2) National Research Medical Center of Phthisiopulmonology and Infectious Diseases, Ministry of Health of Russia, Moscow, Russia; 3) I.M. Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University), Ministry of Health of Russia, Moscow, Russia; 4) Rostov State Medical University, Ministry of Health of Russia, Rostov-on-Don, Russia
Objective. To study the features of the oropharyngeal microbiota and systemic inflammation in HIV-infected patients during antiretroviral therapy (ART) and to assess the possibility of their correction with amino dihydrophthalazinedione sodium (ADPNa).
Subjects and methods. The investigation enrolled 100 HIV-infected patients who received ART. The concentration of lipopolysaccharide-binding protein (LBP) was studied by ELISA. The composition of the oropharyngeal microbiota was determined on a VITEK-2 bacteriological analyzer by the compact disc diffusion method, as well as by mass spectrometry. The patients were randomized into 2 groups. In addition to standard ART, sublingual ADPNa tablets were prescribed for Group 1 patients. The efficiency of therapy was evaluated after 4 weeks according to the time course of changes in the concentration of LBP and in the composition of the oropharyngeal microflora.
Results. The vast majority of patients showed an overgrowth of opportunistic microorganisms, including Staphylococcus aureus and yeast-like fungi of the genus Candida. When an immunomodulator with an anti-inflammatory effect of ADPNa was added to standard ART, there was a more rapid decrease in the blood concentration of LBP and in the number of potential pathogens in the oropharyngeal microbiota.
Conclusion. The cycle use of ADPNa reduces the activity of endotoxinemia and normalizes the oropharyngeal microbiota.

Keywords

HIV infection
immunomodulator
aminodi­hydrophthalasindione sodium (ADPNa)
Galavit
oropharyngeal microbiota

ВИЧ-инфекция приводит к прогрессирующей потере количества и изменению функций CD4+-лимфоцитов, нарушению иммунного ответа и формированию вторичных оппортунистических инфекций [1–2]. Орофарингеальные оппортунистические инфекции встречаются у большинства ВИЧ-инфицированных пациентов, часто вызывая выраженные поражения, которые способствуют ухудшению питания с последующей потерей массы тела. Эпителий полости рта при ВИЧ-инфекции становится более проницаемым. Исследования на модели приматов показали, что в слизистой оболочке кишечника [3, 4] и полости рта инфекция вирусом иммунодефицита обезьян (SIV) приводит к быстрому изменению генов, обеспечивающих регенерацию эпителия [5]. В дополнение к увеличению проницаемости барьера нарушение регенеративной способности эпителия усиливает восприимчивость к ОИ, способствует нарушению гомеостаза микробиоты. LPS-связывающий белок (LBP) играет центральную роль в ответе на эндотоксинемию и достаточно информативно отражает активность инфекционного процесса при ВИЧ-инфекции.

Микробиом человека представляет собой сложное полимикробное сообщество с тонким балансом [6]. Микробиота состоит из множества аэробных и анаэробных видов, которые продуцируют среду пептидов и полисахаридов, взаимодействуют друг с другом для поддержания стабильной симбиотической микросреды. В здоровых тканях полости рта доступ к эпителию надежно защищен от некомменсальных организмов, частично благодаря физическим и физиологическим барьерам, создаваемым микробиомом. Микробные антигены, такие как липополисахарид, флагеллин, пептидогликан, способствуют этому процессу. Эти антигены по-разному стимулируют механизмы врожденного ответа через рецепторы распознавания антигенов (PRR) и тем самым регулируют местную физиологическую среду [7].

Исследования показали, что состав микробиома ротоглотки изменяется вследствие ВИЧ-инфекции даже на фоне антиретровирусной терапии (АРТ) [8–14]. При ВИЧ-инфекции отмечается повышение количества грибов рода Candida [10, 12, 13], а также увеличение концентрации ДНК ВПЧ, несмотря на проводимую АРТ [14].

Орофарингеальные заболевания, часто наблюдаемые у больных ВИЧ-инфекцией, способствуют кардиометаболическим нарушениям [15]. Предполагается, что избыточный рост патогенных бактерий (например, Fusobacteria, Prevotella, Porphyromonas spp.) вызывает эндотоксемию с последующим системным воспалением [16]. Повторное воздействие эндотоксина приводит к увеличению риска развития фиброза миокарда и смертности [17].

Полученные данные предполагают связь между бактериальными сообществами полости рта и ротоглотки с системными заболеваниями, однако окончательную роль еще предстоит определить, особенно в отношении больных ВИЧ-инфекцией, поскольку проведенные ранее исследования ограничены небольшими размерами выборки и вариациями в методологии анализа. Это подчеркивает необходимость продолжения изучения характеристики микробиома ротоглотки у больных ВИЧ-инфекцией, получающих АРТ, а также поиска новых терапевтических подходов в дополнение к АРТ.

С целью коррекции нарушений микробиоты ротоглотки представляется перспективным изучение эффективности применения препаратов с противовоспалительным и иммуномодулирующим действием. Основные фармакологические эффекты аминодигидрофталазиндиона натрия (АДФNa, галавит®) обусловлены его влиянием на репаративные процессы в тканях, а также снижением образования фиброзной ткани при заживлении, повышением неспецифической резистентности организма к инфекционным заболеваниям [18]. В клинических исследованиях было показано положительное влияние АДФNа на нормализацию показателей иммунного статуса и цитокинового профиля при целом ряде неинфекционных и инфекционных заболеваний, в том числе вирусной этиологии [19–21].

Учитывая вышеизложенное, целью настоящей работы явилось изучение особенностей состава микробиоты ротоглотки и системного воспаления у больных ВИЧ-инфекцией на фоне АРТ и оценка возможности их коррекции АДФNа.

Материалы и методы

В исследовании приняли участие 100 больных ВИЧ-инфекцией в возрасте 39,4 ± 2,2 года. Все пациенты в течение не менее 1 года получали АРТ, назначенную в соответствии с современными нормативными документами, действующими на момент проведения исследования1. Рандомизацию проводили методом случайной выборки. Пациенты были распределены на 2 равные группы по 50 человек в каждой. По основным клиническим параметрам, возрасту и полу, стадии ВИЧ-инфекции, уровню CD4+-лимфоцитов группы были сопоставимы, что и позволило провести в дальнейшем их сравнение (табл. 1). В соответствии с клиническим протоколом исследования клинико-лабораторное обследование пациентов проводили исходно (1-й визит) и через 4 нед. (2-й визит) при плановом диспансерном наблюдении.

100-1.jpg (318 KB)

Пациентам 1-й группы при 1-м визите помимо планового наблюдения и лечения дополнительно к стандартной АРТ назначали сублингвальные таблетки АДФNa: по 2 таблетки 2 раза в день в течение 10 дней, затем по 2 таблетки 2 раза через сутки в течение 10 дней. Эффективность терапии оценивали при 2-м визите через 4 нед. наблюдения по результатам динамики концентрации LBP и изменений микробиома ротоглотки.

Исследование концентрации LBP проводили методом ИФА с использованием тест-системы Hbt Human LBP ELISA Kit, Product Number: HK315 (Hycult biotechnology, Голландия).

Показатели, характеризующие состав и наличие изменений микрофлоры слизистой оболочки задней стенки глотки, определяли на бактериологическом анализаторе VITEK-2 соmpact (BioMerieux, Франция) и дискодиффузионным методом. Поверхность задней стенки ротоглотки была выбрана для забора проб микробиома в связи с тем, что на этом анатомическом участке обычно меньше различий в структуре микробного сообщества по сравнению с другими нишами полости рта, а также эта локализация чаще связана с проявлениями ВИЧ-ассоциированных заболеваний полости рта. Использовали стандартную методику забора мазков с дальнейшим проведением качественно-количественного анализа состава выделенных микроорганизмов. Во время забора материала со слизистой оболочки ротоглотки ни у одного пациента не было клинических проявлений заболеваний полости рта и ротоглотки. Кроме того, ни один из участников исследования не получал одновременного симптоматического или профилактического лечения, в том числе антибактериальными или противогрибковыми препаратами. Для выделения микроорганизмов применяли дифференциально-диагностические среды: кровяной агар, среды Сабуро, Эндо, желточно-солевой агар (ФБУН ГНЦ ПМБ, Оболенск, Россия), UriSelect-4 (Bio-Rad Laboratories Inc., США). Идентификацию условно-патогенных микроорганизмов (УПМ) проводили на базе MS Microflex Biotyper MALDI-ToF (Bruker, Германия).

Группа сравнения была сформирована из 30 практически здоровых лиц сопоставимого возраста и пола.

Для статистической обработки использовали программу SPSS Statistics Base 22.0. Проводили определение средних и медианных величин, стандартного отклонения, ошибки средней, достоверности различий, наличия и силы корреляции признаков. Количественные величины представляли как среднее значение (М) ± ошибка средней (m). Определение достоверности различий при сравнении двух групп из совокупностей с нормальным распределением проводили с помощью t-критерия Стьюдента для двух выборок. Критическую величину уровня значимости p принимали равной 0,05, что соответствует критериям, принятым в медико-биологических исследованиях.

Результаты

При рассмотрении качественного и количественного состава микрофлоры общей когорты пациентов в нашем исследовании у 32,0% выявлены представители УПМ в количестве, не превышающем контрольных значений для здоровых лиц. Доминирующими микроорганизмами в биотопе были коагулазоотрицательные стафилококки (Staphylococcus epidermidis и др.) – 22,5%, коринеформные бактерии (Corynebacterium) – 21,5%, альфа-гемолитические стрептококки – 19,5% и Neisseria flavescens – 6,7%.

У остальных 68,0% больных выявлены нарушения микробного состава слизистой оболочки ротоглотки. Всего выделено 59 культур. Чаще всего (в 51,7% случаев) выявляли ассоциации бактерий: двух- (33,3%), трех- (13,3%), четырех- и более компонентные (5,1%).

Среди УПМ с избыточным ростом преобладали стрептококки альфа-гемолитические – 48,0%, коагулазоотрицательные – 32,4%, коринеформные бактерии (Corynebacterium) – 24,5%, Staphylococcus aureus – 22,5% и пневмококки (S. pneumoniae) – 17,6%. С большой частотой (13,7%) выявляли микроорганизмы рода Streptococcus группы А, обладающие бета-гемолитической активностью (S. pyogenes, S. agalactiae и др.). Альфа-гемолитические стрептококки были представлены S. salivarius, S. mitis, S. viridans, S. mutans, S. ovaries. У 17,6% больных был выделен Streptococcus pneumoniae, у 4,0% – негемолитические стрептококки. В единичных случаях выделяли Streptococcus anginosus, S. оralis и S. peroris.

Род Staphylococcus в большинстве случаев был представлен Staphylococcus aureus, а также коагулазоотрицательными стафилококками. Выявлено большое разнообразие коагулазонегативных стафилококков: S. epidermidis, S. haemolyticus, S. saprophyticus, S. cohnii, S. succinus.

Избыточный рост Neisseria отмечен у 16,7% пациентов. В большинстве случаев были выделены Neisseria flavescens, реже – Neisseria perflava, Neisseria subflava, Neisseria mucosa.

Частота выявления микроорганизмов семейства Enterobacteriaceae в биотопе ротоглотки составила 10,8%. Это семейство было представлено преимущественно бактериями рода Escherichia, реже (в 1% случаев) –энтерококками и Klebsiella.

В 10,8% случаев определяли микроорганизмы из группы неферментирующих бактерий: Acinetobacter, Pseudomonas aeruginosa и Chryseobacterium spp. P. aeruginosa, обладающая высокой резистентностью к действию антибактериальных препаратов, была выделена только у 1% больных. Также редко выделяли Chryseobacterium spp. (у 1% больных). При изучении чувствительности к антибактериальным препаратам этих бактерий в 50% случаев выявлена устойчивость ко всем антибиотикам и бактериофагам.

Благодаря применению современного метода масс-спектрометрии при проведении идентификации УПМ, у больных ВИЧ-инфекцией были выделены редко встречающиеся микроорганизмы: Gemella haemolysans, Massilia timonae, Ervinia spp., Pannonibacter phragmitetus и Weissella minor.

Грибковая микрофлора выявлена у 19,6% больных и представлена дрожжеподобными грибами рода Candida. У подавляющего большинства пациентов была выделена Candida albicans. Также среди представителей грибковой микрофлоры в единичных случаях были обнаружены Candida cruzei. У 1 пациентки был обнаружен род дрожжей Pichia семейства Saccharomycetaceae.

При сравнении видового и количественного состава основных представителей резидентной аэробной и факультативной аэробной групп микроорганизмов, выделенных из ротоглотки перед началом исследования в обеих группах, достоверных различий не обнаружено (табл. 2).

102-1.jpg (289 KB)

При исследовании через 4 нед. в 1-й группе отмечено снижение доли пациентов с избыточным ростом УПМ с 74,0 ± 6,2 до 49,9 ± 7,1% (р < 0,05). Во 2-й группе в этот же период достоверных отличий не зарегистрировано.

Через 4 нед. наблюдения у пациентов 1-й группы снизилась частота регистрации избыточного роста бета-гемолитических стрептококков (S. pyogenes, S. agalactiae и др.) с 20,0 ± 5,7% при первом визите до 6,0 ± 3,4% при втором (р < 0,05). При повторном визите было зарегистрировано также снижение частоты выявления Staphylococcus aureus и дрожжеподобных грибов рода Candida в количестве более 103 КОЕ/мл (табл. 2).

Примечательно, что в 1-й группе снизилась и частота выявления энтеробактерий с 12,0 ± 4,6% на старте лечения АДФNa до 2,0 ± 2,0% через 4 нед. наблюдения, а также ацинетобактерий с 8,0 ± 3,8% до 0 соответственно (рис. 1, 2). При этом во 2-й группе между данными о частоте выявления энтеробактерий и Acinetobacter, полученными при 1-м и 2-м визитах, достоверных отличий не выявлено.

103-1.jpg (172 KB)

103-2.jpg (82 KB)Концентрация LBP до начала лечения в 1-й и 2-й группах составляла 85,9 ± 3,8 и 86,3 ± 4,8 мкг/ мл соответственно при референсных значениях у здоровых лиц 6,2 ± 1,53 мкг/л (p < 0,01) (рис. 3). При исследовании через 4 нед. в 1-й группе отмечено снижение LBP до 70,9 ± 4,6 мкг/мл (р < 0,05), во 2-й группе достоверных изменений содержания LBP в динамике заболевания не выявлено.

Обсуждение

Изучение микробиома человека продолжает оставаться актуальным вопросом, однако сообщения об изменениях в микробиоте у больных ВИЧ-инфекцией все еще ограничены. Последние достижения, обусловленные внедрением современных методов исследования в микробиологии, включая масс-спектрометрию, значительно увеличили наши диагностические возможности для анализа микробных ассоциаций, включая их функциональные изменения, влияющие на течение заболеваний.

Большинство предыдущих исследований перорального микробиома были спланированы как перекрестные, в которых сравнивали показатели ВИЧ-инфицированных участников с ВИЧ-отрицательным контролем [10–12]. В других работах оценивали продольные изменения орофарингеальной микрофлоры после начала АРТ, которые показывают, что ВИЧ и АРТ приводят к изменениям в специфических бактериальных таксонах в микробиоме ротоглотки. Экспрессия этих бактериальных сообществ может также привести к дальнейшей иммунной активации, поскольку микробная транслокация из полости рта может способствовать формированию системного воспаления, подобно эндотоксинемии, развивающейся при попадании в системный кровоток микробных компонентов из просвета кишечника [22].

Современные литературные данные свидетельствуют о возможности использовать определение концентрации LBP в качестве диагностического биомаркера эндотоксинемии и индикатора системного ответа на LPS при различных инфекционных процессах.

Восстановление микроэкологии ротоглотки имеет важное клиническое значение в предотвращении дальнейшего распространения множества ассоциированных между собой микроорганизмов, предупреждая генерализацию и хронизацию патологических очагов инфекции. В нашем исследовании в 10,8% случаев выявлены представители группы неферментирующих бактерий (Acinetobacter, Pseudomonas aeruginosa и Chryseobacterium spp.), играющие основную роль в развитии внутрибольничных инфекций, особенно у иммунокомпрометированных лиц. Каждый выделенный вид микроорганизмов из группы неферментирующих бактерий способен вызывать рецидивирующие инфекции нижних дыхательных путей у больных с выраженным иммунодефицитным состоянием, особенно при многократных курсах антибиотикотерапии [23]. С такой же частотой (10,8%) у пациентов в ротоглотке присутствовали представители семейства Enterobacteriaceae. Как известно, распространение E. coli может вызвать заболевания желудочно-кишечного тракта, геморрагический колит, гемолитико-уремический синдром, инфекции мочевыводящих и желчевыводящих путей, сепсис [23].

Следует обратить внимание и на выделение в 1% случаев редкого возбудителя оппортунистических микозов – дрожжей рода Pichia. В настоящее время они встречаются у пациентов с ослабленным иммунитетом. Известны случаи интерстициальной пневмонии, инфекционного эндокардита, инфекций мочевыводящих путей и слизистой оболочки полости рта, ассоциированные с Pichia [11].

Таким образом, в большинстве случаев микро­флора ротоглотки больных ВИЧ-инфекцией даже на фоне АРТ имеет существенные различия с составом микробиоты аналогичной локализации у здоровых лиц. Потенциально опасным является наличие представителей оппортунистических инфекций, практически не встречающихся у здоровых лиц. С таким составом микробиоты ротоглотки вполне согласуется и высокий уровень LBP, основной функцией которого является связывание эндотоксинов бактерий.

Проведенное исследование продемонстрировало положительное влияние АДФNa на течение ВИЧ-инфекции при добавлении его к стандартной схеме АРТ. Это выразилось в более быстром снижении уровня маркера антиэндотоксиновой защиты LBP, а также числа потенциальных патогенов в микробиоте ротоглотки – бета-гемолитических стрептококков, Staphylococcus aureus, дрожжеподобных грибов рода Candida, энтеробактерий и ацинетобактерий. Вероятно, способность этого препарата оказывать непосредственное или опосредованное влияние на системный воспалительный ответ при ВИЧ-инфекции, в условиях подавления репликации ВИЧ с помощью АРТ, обусловила его позитивное влияние на течение ВИЧ-инфекции. Для определения продолжительности выявленных эффектов, целесообразности и кратности повторных курсов лечения иммуномодулирующими препаратами на фоне АРТ требуются дальнейшие исследования.

Заключение

У подавляющего большинства больных ВИЧ-инфекцией отмечается активация системы антиэндотоксиновой защиты. Анализ видового состава микробиоты ротоглотки показал, что у большей части таких больных отмечается избыточный рост УПМ, в том числе Staphylococcus aureus и дрожжеподобных грибов рода Candida. Доминирующими микроорганизмами в биотопе являются стрептококки. Чаще всего обнаруживаются многокомпонентные ассоциации УПМ с избыточным ростом.

Снижение концентрации LBP и нормализация состава микробиоты ротоглотки у больных ВИЧ-инфекцией наблюдается при дополнении к стандартной АРТ АДФNa. Патогенетическим обоснованием этого является противовоспалительная и иммуномодулирующая активность препарата, связанная с его способностью регулировать функционально-метаболическую активность клеток врожденного и адаптивного иммунитета (в том числе моноцитов, макрофагов, нейтрофилов, натуральных киллеров) и цитокиновый профиль в условиях подавления репликации ВИЧ на фоне АРТ. Курсовой прием АДФNa способствует повышению эффективности и переносимости АРТ.

References

  1. Ghannoum M. A., Mukherjee P. K., Jurevic R. J., Retuerto M., Brown R. E., Sikaroodi M., Webster-Cyriaque J., Gillevet P. M. Metabolomics reveals differential levels of oral metabolites in HIV-infected patients: toward novel diagnostic targets. Omics А Journal of Integrative Biology. 2013; 17(1): 5–15. DOI: 10.1089/omi.2011.0035.
  2. Shiboski C. H., Patton L.L., Webster Cyriaque J.Y., Greenspan D., Traboulsi R.S., Ghannoum M., Jurevic R., Phelan J.А., Reznik D., Greenspan J.S. The Oral HIV/AIDS Research Alliance: updated case definitions of oral disease endpoints. J. Оral Pathol. Med. 2009; 38(6): 481–8. DOI: 10.1111/j.1600-0714.2009.00749.x.
  3. Dandekar S., George M.D., Bäumler A.J. Th17 cells, HIV and the gut mucosal barrier. Current Оpinion in HIV and AIDS 2010; 5(2): 173–8. DOI: 10.1097/COH.0b013e328335eda3.
  4. Sankaran S., George M.D., Reay E., Guadalupe M., Flamm J., Prindiville T., Dandekar S. Rapid onset of intestinal epithelial barrier dysfunction in primary human immunodeficiency virus infection is driven by an imbalance between immune response and mucosal repair and regeneration. J. Virol. 2008; 82 (1): 538–45. DOI: 10.1128/JVI.01449-07.
  5. George M. D. Verhoeven D., Sankaran S., Glavan T., Reay E., Dandekar S. Heightened cytotoxic responses and impaired biogenesis contribute to early pathogenesis in the oral mucosa of simian immunodeficiency virus-infected rhesus macaques. Clin. Vaccine Immunol. 2009; 16(2): 277–81. DOI: 10.1128/CVI.00265-08.
  6. Крюков А.И., Кунельская Н.Л., Гуров А.В., Изотова Г.Н., Старостина А.Е., Лапченко А.С. Клинико-микробиологическая характеристика дисбиотических изменений слизистой оболочки полости рта и ротоглотки. Медицинский совет 2016; (6): 32–5.

    Kryukov A.I., Kunel'skaya N.L., Gurov A.V., Izotova G.N., Starostina A.E., Lapchenko A.S. [Clinical and microbiological characteristics of dysbiotic changes in the mucous membrane of the oral cavity and oropharynx]. Medicinskij sovet 2016; (6): 32–5. (In Russ.).

  7. Alexopoulou L., Kontoyiannis D. Contribution of microbial-associated molecules in innate mucosal responses. Cellular and molecular life sciences: CMLS 2005; 62(12): 1349–358. DOI: 10.1007/s00018-005-5039-x .
  8. Beck J. M., Beck J.M., Schloss P.D., Venkataraman A., Twigg I.H., Jablonski K.A., Bushman F.D. Multicenter comparison of lung and oral microbiomes of HIV-infected and HIV-uninfected individuals. Am. J. Respirat. Crit. Care Med. 2015; 192(11): 1335–44. DOI: 10.1164/rccm.201501-0128OC
  9. Kistler J. O., Arirachakaran P., Poovorawan Y., Dahlén G., Wade W.G. The oral microbiome in human immunodeficiency virus (HIV)-positive individuals. J. Med. Microbiol. 2015; 64(9): 1094–101. DOI: 10.1099/jmm.0.000128.
  10. Saxena D., Li Y., Yang L., Pei Z, Poles M., Abrams W.R., Malamud D. Human microbiome and HIV/AIDS. Curr. HIV AIDS Rep. 2012; 9(1): 44–51. DOI: 10.1007/s11904-011-0103-7.
  11. Mukherjee P.K., Chandra J., Retuerto M., Sikaroodi M., Brown R.E., Jurevic R., Salata R.A., Lederman M.M., Gillevet P.M., Ghannoum M.A. Oral mycobiome analysis of HIV-infected patients: identification of Pichia as an antagonist of opportunistic fungi. PLoS Рathogens 2014; 10(3): e1003996. DOI: 10.1371/journal.ppat.1003996.
  12. Hegde M.C., Kumar A., Bhat G., Sreedharan S. Oral microflora: a comparative study in HIV and normal patients. Indian J. Otolaryngol. 2014; 66(1): 126–32. DOI: 10.1007/s12070-011-0370-z.
  13. Dang A. T., Cotton S., Sankaran-Walters S., Li C., Lee C.M., Dandekar S., Paster B.J., George M.D. Evidence of an increased pathogenic footprint in the lingual microbiome of untreated HIV infected patients. BMC Microbiol. 2012; 12(1): 153. DOI: 10.1186/1471-2180-12-153.
  14. Shiboski C. H., Lee A., Chen H., Webster-Cyriaque J., Seaman T., Landovitz R.J., John M., Reilly N., Naini L., Palefsky J., Jacobson M.A. Human papillomavirus infection in the oral cavity of HIV patients is not reduced by initiating antiretroviral therapy. AIDS (London, England). 2016; 30(10): 1573. DOI: 10.1097/QAD. 0000000000001072.
  15. Noguera-Julian M. Guillén Y., Peterson J., Reznik D., Harris E.V., Joseph S. J. Oral microbiome in HIV-associated periodontitis. Medicine 2017; 96(12): e5821. DOI: 10.1097/MD.0000000000005821.
  16. Liljestrand J. M., Paju S., Buhlin K., Persson G.R., Sarna S., Nieminen M.S. Lipopolysaccharide, a possible molecular mediator between periodontitis and coronary artery disease. J. Сlin. Рeriodontol. 2017; 44(8): 784–92. DOI: 10.1111/jcpe.12751.
  17. Lew W.Y.W., Bayna E., Molle E. D., Dalton N.D., Lai N.C., Bhargava V., Mendiola V., Clopton P., Tang T. Recurrent exposure to subclinical lipopolysaccharide increases mortality and induces cardiac fibrosis in mice. PloS Оne 2013; 8(4): e61057. DOI: 10.1371/journal.pone.0061057
  18. Бусленко А.О., Пшеничная Н.Ю., Алешукина А.В. Изменение состава микрофлоры кишечника при экспериментальной клебсиеллезной инфекции у лабораторных мышей и ее терапии различными иммуномодулирующими препаратами. Врач-аспирант 2015; 71(4.1): 139–44.

    Buslenko A.O., Pshenichnaya N.Yu., Aleshukina A.V. [Changes in the composition of the intestinal microflora in experimental Klebsiella infection in laboratory mice and its treatment with various immunomodulating drugs]. Vrach-aspirant 2015; 71(4.1): 139–44. (In Russ.).

  19. Покровский А.В., Мхитарова Л.А., Царев В.Н. Прогностическое значение провоспалительных цитокинов при ингаляционном применении галавита в комплексном лечения ХОБ. Вестник Дагестанской государственной медицинской академии 2014; 1(10): 19–23.

    Pokrovsky A.V., Mhitarova L.A., Tsarev V.N. [Prognostic value of pro-inflammatory cytokines in case of inhalation use of galavit in the complex treatment of chronic obstructive pulmonary disease]. Vestnik Dagestanskoj gosudarstvennoj medicinskoj akademii 2014; 1(10): 19–23 (In Russ.).

  20. Бусленко А.О., Алешукина А.В., Пшеничная Н.Ю. Хуказова С.А., Костенко О.Д., Гопаца Г.В., Малышева М.И.Местный цитокиновый профиль у взрослых пациентов с острыми кишечными инфекциями и его коррекция с применением иммуномодулирующей терапии. Эпидемиол. инфекц. болезни. Актуал. вопр. 2017; (4): 58–64.

    Buslenko A.O., Aleshukina A.V., Pshenichnaya N.Yu., Hukazova S.A., Kostenko O.D., Gopaca G.V., Malysheva M.I. [Local cytokine profile in adult patients with acute intestinal infections and its correction using immunomodulating therapy]. Èpidemiologiâ i infekcionnye bolezni. Аktual'nye voprosy 2017; (4): 58–64. (In Russ.).

  21. Бусленко А.О., Пшеничная Н.Ю., Алешукина А.В., Усаткин А.В., Костенко О.Д., Хуказова С.А., Диденко И.В., Усаткина Т.В. Острые кишечные инфекции у взрослых: оценка состояния интестинальной микрофлоры и эффективности аминодигидрофталазиндиона натрия в составе их комплексной терапии. Эпидемиол. инфекц. болезни. Актуал. вопр. 2016; (4): 57–64.

    Buslenko A.O., Pshenichnaya N.Yu., Aleshukina A.V., Usatkin A.V., Kostenko O.D., Hukazova S.A., Didenko I.V., Usatkina T.V. [Acute intestinal infections in adults: assessment of the state of intestinal microflora and the effectiveness of sodium aminodihydrophthalazinedione as part of their complex therapy]. Èpidemiologiâ i infekcionnye bolezni. Аktual'nye voprosy 2016; (4): 57–64. (In Russ.).

  22. Матузкова А.Н., Пшеничная Н.Ю., Суладзе А.Г., Досягаева Л.И., Твердохлебова Т.И., Яговкин Э.А. Клинико-диагностическое значение оценки показателей системного воспаления у больных с ВИЧ-инфекцией. ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии 2018; 10(3): 64–71.

    Matuzkova A.N., Pshenichnaya N.Yu., Suladze A.G., Досягаева Л.И., Твердохлебова Т.И., Яговкин Э.А. [Clinical and diagnostic value of assessing systemic inflammation in patients with HIV infection]. VICh-infekciya i immunosupressii 2018; 10(3): 64–71. (In Russ.).

  23. Джораева С.К., Гончаренко В.В., Щеголева Е.В., Щербакова Ю.В., Безрученко А.А. Состав и функции микробиоценозов различных биотопов макроорганизма и клиническая значимость их нарушений. Дерматология и венерология 2015; (2): 5–19.

    Dzhoraeva S.K., Goncharenko V.V., Shhegoleva E.V., Shherbakova Yu.V., Bezruchenko A.A. [The composition and functions of microbiocenoses of various biotopes of a macroorganism and the clinical significance of their disorders]. Dermatologiya i venerologiya 2015; (2): 5–19. (In Russ.).

About the Authors

Аnna N. Matuzkova, Infectiologist, Polyclinic Department, Southern District Center for AIDS Prevention and Control, Rostov Research Institute of Microbiology and Parasitology, Russian Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Well-Being, Rostov-on-Don, Russia; е-mail: matuzkova@yandex.ru; ORCID: https://orcid.org/0000-0002-5980-3436
Prof. Natalia Yu. Pshenichnaya, MD; Head, International Department for Organization of Medical Care, National Research Medical Center of Phthisiopulmonology and Infectious Diseases, Ministry of Health of Russia, Moscow, Russia; e-mail: natalia-pshenichnaya@yandex.ru; ORCID: https://orcid.org/0000-0003-2570-711X
Anna V. Aleshukina, MD, Senior Researcher; Head, Laboratory of Virology, Microbiology and Molecular Biological Studies, Rostov Research Institute of Microbiology and Parasitology, Russian Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Well-Being, Rostov-on-Don, Russia; e-mail: niimicrodouble@yandex.ru; ORCID: https://orcid.org/0000-0002-9797-2441
Antonina A. Ryndich, Cand. Med. Sci.; Head, Southern District Center for AIDS Prevention and Control, Rostov Research Institute of Microbiology and Parasitology, Russian Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Well-Being, Rostov-on-Don, Russia; e-mail: hivrost@mail.ru; ORCID: https://orcid.org/0000-0002-9568-7794
Aleksandr G. Suladze, Cand. Med. Sci., Infectiologist, Southern District Center for AIDS Prevention and Control, Rostov Research Institute of Microbiology and Parasitology, Russian Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Well-Being, Rostov-on-Don, Russia; e-mail: hivrost@mail.ru; ORCID: https://orcid.org/0000-0002-9051-1220
Tatiana I. Tverdokhlebova, MD, Associate Professor; Director, Rostov Research Institute of Microbiology and Parasitology, Russian Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Well-Being, Rostov-on-Don, Russia; e-mail: niimicrodouble@yandex.ru; ORCID: https://orcid.org/0000-0002-4280-6702
Andrey S. Zhuravlev, Student, “Medicine of the Future” Center for Innovative Educational Programs (CIEP), I.M. Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University), Ministry of Health of Russia, Moscow, Russia; e-mail: Andrew0898@yandex.ru; ORCID: https://orcid.org/0000-0002-9130-707
Prof. Denis V. Dontsov, MD, Associate Professor, Department of Infection Diseases, Rostov State Medical University, Ministry of Health of Russia, Rostov-on-Don, Russia; e-mail: d¬_dontcov@mail.ru; ORCID: https://orcid.org/0000-0003-4938-2962

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.